Макрогранулы агарозы seakem gold, содержащие секреторные клетки, и их применение - RU2417090C2

Чертежи

Описание

ОБЛАСТЬ, К КОТОРОЙ ОТНОСИТСЯ ИЗОБРЕТЕНИЕ

Данное изобретение относится к способам повышения качества и увеличения количества секреторных клеток в содержащих их агарозных макрогранулах, покрытых агарозой. Это осуществляют, используя описанную ниже агарозу Seakem Gold.

ПРЕДПОСЫЛКИ СОЗДАНИЯ ИЗОБРЕТЕНИЯ И УРОВЕНЬ ТЕХНИКИ

В настоящее время установлено, что заместительная терапия островковыми клетками представляет собой подходящий метод лечения пациентов с различными нарушениями. Такие больные включают больных раком, у которых удаляют верхний отдел брюшной полости (Tzakis, et al., Lancet 336: 402- 405 (1990)); панкреатитом (Clayton, et al., Transplantation 76: 92- 98 (2003); Farney, et al., Surgery 110: 427-437 (1991); Fontes, et al., Transplant Proc 24: 2809 (1992); Obenholzer, et al., Transplantation 69: 1115-1123 (2000); Robertson, et al., Diabetes 50: 47-50 (2001)), и инсулинзависимых пациентов, где трансплантация островков представляет собой возможный метод лечения (Goss, et al., Transplantation 74: 1761-1766 (2002); Ricordi, et al, Transplantation 75: 1524-1527 (2003); Ryan, et al., Diabetes 50: 710-719 (2001); Shapiro, et al, N. Engl. J. Med 343: 230-238 (2000)).

Благодаря применению островков в терапии, как указано выше, естественно, существует интерес к созданию способов их выделения. Хотя имеется множество сообщений о выделении островков автоматическим методом (Brandhorst, et al., Exp.Clin. Endocrinol Diabetes 103 Suppl. 2: 3-14 (1995); Cui, et al., Cell Transplant 6: 48-54 (2001); Marchetti, et al., Transplantation 52: 209-213 (1991); Miyamoto, et al., Cell Transplant 7: 397-402 (1998); Nielsen, et al., Сотр. Med. 52: 127-135 (2002); Swanson, et al., Hum. Immunnol 62: 739-749 (2001); Toomey, et al., Brit. J. Surg. 80: 240-243 (1993); Toso, et al., Cell Transplant 9: 297-305 (2000); Wennberg, et al., Transplant. Proc. 33: 2537 (2001)), известно, что выделение островков остается трудной проблемой. Например, во всех нижеперечисленных сообщениях: Bosta, et al, J. Investig Med 43: 555-566 (1995); Krickhahn, et al., Cell Transplant 11: 827-838 (2002); Krickhahn, et al., Ann Transplant 6: 48-54 (2001), O'Neil, et al., Cell Transplant 10: 235-246 (2001) и White, et al., Horm. Metab. Res 31: 579-524 (1999), обсуждаются относящиеся к этому вопросы.

Производство макрогранул, которые содержат секреторные клетки и/или органеллы, такие как раковые клетки, островки и т.д., хорошо известно. См., например, патенты США No. 6818230; 6808705; RE 38027; 6303151; 6224,912; 5888497 и 5643569, а также опубликованную патентную заявку США 2005/0096561.

В этих патентных документах агарозу применяют для инкапсулирования биологических материалов, после чего полученные структуры дополнительно инкапсулируют во второй слой агарозы.

Те, кто знаком с агарозой, знают, что выпускается множество типов и разновидностей этого материала. Seakem Gold, один из таких типов агарозы, описан в патенте США No. 4983268. Авторами настоящего изобретения найдено, что Seakem Gold агароза дает продукт, чьи свойства неожиданно превосходят свойства продуктов предыдущего уровня техники.

КРАТКОЕ ОПИСАНИЕ ФИГУР

На Фигуре 1 представлена информация о средних суточных уровнях глюкозы у тестируемых и контрольных животных.

ПОДРОБНОЕ ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ

ПРИМЕР 1

Островковые клетки (островки) выделяются в соответствии с методом, представленным в Gazda, et al., опубликованная патентная заявка 2006/0121445, дата публикации 8 июня 2006 года, Регистрационный номер 11/273737. Однако следует иметь в виду, что возможны и могут применяться другие методы выделения островков, так что изобретение не зависит от конкретного метода выделения.

После выделения и оценки подходящие поджелудочные железы обрабатывают дальше. Железы освобождают от жира и соединительной ткани, а затем основной проток поджелудочной железы (Вирсунгов проток) канюлируют (игла 16g из нержавеющей стали с тупым концом). Раствор HBSS (солевой раствор Хэнка), содержащий коллагеназу Р, с концентрацией 1.5-2.0 г/л, вливают со скоростью 50 мл/мин при 30°С, чтобы 2 мл раствора приходилось на грамм веса поджелудочной железы.

Поджелудочную железу заливают так, чтобы покрыть ее, добавляя 500 мл раствора HBSS и 2% PS совместно с 200 мл раствора коллагеназы при 30°С. Вода с температурой 39°С, циркулирующая снаружи, медленно нагревает орган до 37°С и поддерживает температуру дигестата при 36-37°С. Когда распад органов становится очевидным (в целом через 10-20 мин и через 5-10 минут после достижения температуры 37°С), ферментативное расщепление прекращают.

Затем собранный дигестат центрифугируют, супернатанты отсасывают и полученный осадок суспендируют в 10% PS и растворе, фиксирующем орган. Затем островки очищают в прерывистом градиенте фиколла с градиентами плотности 1.105, 1.095, 1.085 и 1.05 г/см³, HBSS плюс 2% PS, в пробирках на 50 мл. Содержимое в пробирках центрифугируют при 650 g при 4°С, и слои, содержащие островки, собирают и три раза отмывают в HBSS плюс 10% PS, после чего их вручную очищают от неостровковой ткани с помощью препаровальной лупы. Островки ресуспендируют и для подсчета выхода островков используют два образца по 0.5 мл.

Средний выход для десяти опытных поджелудочных желез составляет 130000 EIN, при 1101 ETN на грамм ферментированной (переваренной, расщепленной) ткани. Чистота во всех случаях превышает 90%. В 9 органах жизнеспособность островков выше 89%.

ПРИМЕР 2

После выделения островков определяют различные показатели, включая чистоту и жизнеспособность, указанные выше.

Чистоту определяют, окрашивая около 500 EIN с помощью DTZ в течение десяти минут, а затем проводят стандартный визуальный анализ с помощью препаровальной лупы и цифровой камеры.

Жизнеспособность определяют, окрашивая образец диацетатом флуоресцеина (FDA) и бромидом этидия (ЕВ). Около 500 EIN добавляют к 1 мл RPMI, 10% PS и 1% антибиотика/антимиотика ("А/А"). Затем добавляют 20 мкл красителя FDA, приготовленного из 10 мг ГО А и 1 мл ацетона, и 200 мкл красителя ЕВ, приготовленного из 30 мкл ЕВ и 1 мл PBS. Островки окрашивают в темноте в течение семи минут, а затем случайные образцы из 10-50 островков рассматривают под флуоресцентным микроскопом и фотографируют для определения жизнеспособности стандартным визуальным анализом.

Также определяют содержание инсулина в островках, помещая около 500 EIN в спиртовый раствор кислоты для экстракции (7.2 мл 1 N НСl, 400 мл 100% денатурированного этанола). Образцы хранят при -20°С и проводят радиоиммунный анализ (РИА, RIA).

ПРИМЕР 3

В этом и последующих примерах рассматривается вопрос, действительно ли островки, идентифицированные как полезные и выделенные как описано, можно применять в макрогранулах.

Очищенные островки ресуспендируют в RPMI 1640+10% PS+1% А/А до объема 2000 EIN/мл. Островки равномерно распределяют по пробиркам, так чтобы каждая пробирка содержала 1 мл суспензии с 2000 EIN.

После осаждения по весу супернатанты удаляют и к каждому образцу добавляют 0.5 мл 1.5% агарозы Seakem Gold при 50°С, приготовленной в минимальной поддерживающей среде плюс 2.5% HEPES буфер, и равномерно перемешивают. Затем суспензию вытесняют в нижний слой стерильным минеральным маслом, получают четыре бусины (гранулы, сферы) с гладкими поверхностями и равномерным распределением островков.

Макрогранулы (макросферы) удаляют и дважды отмывают (RPMI+5% PS+1% А/А). Эти макрогранулы культивируют в том же растворе, во влажной атмосфере с 5% СО₂ в течение 5-7 дней, после чего их трижды отмывают в RPMI+1% А/А, а затем наносят второе агарозное покрытие. Для этого 0.5 мл 5% агарозы в MEM плюс буфер HEPES при 60°С пипеткой переносят в стерильную пластиковую ложечку и каждую макрогранулу прикатывают 3-5 раз, получая однородное второе агарозное покрытие. После переноса в стерильное минеральное масло для получения гладкой поверхности макрогранулы (макросферы, макробусины) удаляют, дважды отмывают в RPMI+2.5% PS+1% А/А и инкубируют при 37°С в увлажненной атмосфере 5% СО₂ плюс воздух. Естественно, могут применяться другие методы приготовления гранул (сфер, бусин).

Найдено, что макрогранулы (макросферы), содержащие инкапсулированные островки, остаются жизнеспособными в течение более 6 месяцев, радиоиммуноанализы, проводимые в течение этого времени, показывают, что они продолжают продуцировать высокие выходы инсулина.

ПРИМЕР 4

В данном примере описаны эксперименты, демонстрирующие способность островков поджелудочной железы свиньи функционировать in vivo.

В опыте участвуют не страдающие ожирением, но страдающие диабетом самцы мышей СВ-PrKdc/J в возрасте 7-9 недель. После акклиматизации в течение недели животным дают 275 мг/кг стрептозотоцина, который вызывает диабет. Через девять дней, когда уровни глюкозы в крови в среднем составляют 480 мг/дл, начинают терапию инсулином.

На 34-35 день после введения стрептозотоцина животные получают около 1000 EIN островков поджелудочной железы свиньи, которые переносят в сгустке крови по методу, описанному в статье Bowen et al., Aust. J. Exp.Biol. Med. Sci. 58: 441-447 (1980). Коротко говоря, островки осаждают (пеллетируют) из суспензии и среды отсасывают. Затем у животного берут около 5-10 мкл крови, добавляют к островкам и дают возможность свертываться. Животных - реципиентов анестезируют равными объемами кетамина (167 мг/дл), ксилазина (33 мг/мл) и физиологического раствора. Смесь вводят подкожно в дозе 0.5 мл/100 г. На левом боку делают небольшой разрез для того, чтобы открыть почку, и с помощью препаровальной лупы делают небольшой разрез в капсуле (оболочке) почки. Затем оболочку отделяют от почки, островки/сгусток помещают под оболочку, разрез закрывают и животных оставляют восстанавливаться.

На 38-39 день проводят нефрэктомию на животных. Коротко говоря, после анестезии почку, несущую трансплантат, раскрывают, кровеносные сосуды почки лигируют и у каждого животного отсекают почку. Через пять дней животных умерщвляют и поджелудочные железы собирают для гистологического подтверждения полного разрушения островковых бета клеток.

Образцы ткани помещают в 10% нейтральный буфер на 24 часа, а затем переносят в 70% этиловый спирт.

После этого ткани заключают в парафин и срезы по 5 мкм окрашивают гематоксилином и эозином. Срезы поджелудочной железы и трансплантированной почки окрашивают традиционными методами для определения инсулин- и глюкагонсодержащих клеток, а затем исследуют.

После пересадки островков все мыши становятся нормогликемическими. После нефрэктомии у всех мышей в течение четырех дней наблюдается гипергликемия.

ПРИМЕР 5

В данном примере описываются эксперименты, предпринятые для определения величины (степени), до которой гранулы (сферы, бусины), покрытые агароза-агарозной оболочкой, приготовленной из различных видов агарозы, вызывают тканевую реакцию, т.е. воспаление, у реципиентов.

В эксперименте участвуют две линии крыс, а именно крысы Wistar и Sprague Dawley. Всего в испытании участвует 29 крыс (14 Wistar, 15 Sprague Dawley). Три крысы каждой линии участвуют в испытании Seakem Gold, покрытых агароза-агарозной оболочкой гранул по изобретению. Три крысы каждой линии участвуют в испытании типов агарозы FMC HGT(P) и Amresco. Две крысы линии Wistar и четыре крысы линии Sprague Dawley участвуют в испытании агарозы Sigma HV. И наконец, три крысы линии Wistar и две крысы линии Sprague Dawley участвуют в испытании агарозы Sigma LV.

Всего шестьдесят пустых (незаполненных, без нагрузки) гранул (сфер, бусин) каждого типа имплантируют в брюшную полость крыс, за двумя исключениями. Двум крысам линии Sprague Dawley имплантируют либо 54, либо 59 гранул агарозы Sigma HV. За крысами наблюдают в течение 3 месяцев, а затем умерщвляют. Для изучения воспаления извлекают различные органы (селезенку, печень, почку, скелетную мышцу, поджелудочную железу и брыжейку).

Воспаление ткани оценивают по стандартам, одобренным Американским Обществом Ветеринарной Патологии. При оценке применяют 6-балльную шкалу для определения воспаления, в основном следующим образом:

0 = нормальное состояние

1 = минимальное (менее 10% воспаление)

2 = слабое (10-25% воспаление)

3 = умеренное (50-75% воспаление)

4 = выраженное (50-75% воспаление)

5 = тяжелое (более 75% воспаление)

Оцениваются данные для каждого животного, затем они усредняются. Результаты представлены ниже:

Средние оценки тяжести по (показателям) ткани:

Средние оценки тяжести по (показателям) ткани

Сумма средних оценок тяжести

Очевидно, что покрытые двойной агарозной оболочкой гранулы по изобретению вызывают наименьшее воспаление.

Дальнейшие исследования воспаления проводят на собаках, сравнивая гранулы (бусины, сферы) по изобретению с гранулами, изготовленными из FMC HGT(P) агарозы (FMC HGTP агарозы) и покрытыми ею. И снова гранулы с агароза-агарозными покрытиями по изобретению вызывают меньшее воспаление.

В следующем исследовании собаки получали гранулы с агароза-агарозным покрытием, которые содержат островки поджелудочной железы свиньи. Животных умерщвляют через 2.5 года и наблюдают только минимальное воспаление. По сравнению с контрольными животными, которым не имплантированы островковые клетки, брюшина и брыжейка имеют совершенно нормальный внешний вид.

ПРИМЕР 6

В этих экспериментах макрогранулы из Seakem Gold агарозы, содержащие островки, которые культивировали in vitro, сравнивают с контрольными (пустыми, без нагрузки) макрогранулами.

Островки, инкапсулированные в Seakem агарозу, готовят как описано выше в Примере 3.

В качестве подопытных животных используют двенадцать самцов спонтанно-диабетических ВВ крыс. Все животные в возрасте 10-15 недель, и у всех животных клинические признаки диабета наблюдаются через 3-16 дней.

На 20-21 день после поступления ВВ крыс анестезируют, вводя подкожно кетамин/ксилазин/NaCl в дозе 2.2-2.3 мл/кг массы тела. После анестезии животным пересаживают имплантат из макрогранул, содержащих островки, в дозе, эквивалентной 1.0-кратной суточной потребности в инсулине, или адекватное количество незаполненных (пустых) макрогранул (без нагрузки).

После имплантации животных наблюдают, причем ежедневно записывают клинические наблюдения, включая общее состояние (хорошее, удовлетворительное или неудовлетворительное), масса тела, уровень глюкозы в крови, содержание глюкозы в моче и содержание кетоновых тел в моче, в процессе исследования отбирают образцы сыворотки, чтобы использовать для определения инсулина, глюкагона и свиного С пептида. Для определения этих характеристик применяют радиоиммунный анализ. Также проводят интраперитонеальные тесты на толерантность к глюкозе.

Через девяносто семь дней после имплантации проводят полное некроскопическое обследование животных. Животных усыпляют, обескровливают и вскрывают брюшную полость.

За время исследования в течение 97 дней шести животным, которые получали гранулы из Seakem агарозы, содержащие островки, не требовалось введение инсулина в отличие от животных, которым имплантировали незаполненные макрогранулы. Этим животным начинали вводить экзогенный инсулин через два дня после начала исследования, так как уровни глюкозы в крови поднимались до 300-500 мг/дл. Два из этих контрольных животных обнаружены мертвыми на третий день исследования, по-видимому, вследствие недостаточности инсулина.

У животных, которые получали гранулы из Seakem агарозы, содержащие островки, средние суточные уровни глюкозы в крови значительно ниже, чем у контрольных. Также у шести подопытных животных наблюдается очень узкий интервал отклонений суточных уровней глюкозы, даже без терапии инсулином.

Через один месяц у этих животных, которым пересадили островки, наблюдается умеренная гипергликемия, но с ограниченной гликемической подвижностью (около 100 мг/дл). Этот результат отличаются от результатов, полученных на контрольных животных, у которых наблюдается экстремальное изменение, около 400- 500 мг/дл, несмотря на введение экзогенного инсулина в дозе 2-3 ед./сутки.

Сначала интраперитонеальные тесты на толерантность к глюкозе проводят на всех животных, чтобы подтвердить клинический диагноз диабета типа I. Этот тест проводят также на 8 и 90 дни после трансплантации. За пять дней до трансплантации реакция на сахарную нагрузку не была явной, но на восьмой день после имплантации реципиенты макрогранул, содержащих островки, проявляют заметную реакцию на сахарную нагрузку, т.е. сначала повышение уровня глюкозы в крови с последующим возвратом к нормогликемии. Равным образом гипергликемия не ингибируется у животных, которые получали незаполненные (пустые) макрогранулы, несмотря на одновременную терапию инсулином, описанную выше.

На 90 день после имплантации проводили другой интраперитонеальный тест на толерантность к глюкозе. Снова восстанавливают исходный (базовый) уровень гликемии для крыс, которые получали макрогранулы с островками, но начальные уровни глюкозы в крови значительно выше, а именно 400 мг/дл. Крысам, которые получали незаполненные макрогранулы, не удается восстановить базовую гликемию (исходный уровень).

Анализ на свиной С-пептид не обнаружил пептид в подопытных животных до имплантации или у реципиентов незаполненных (пустых) макрогранул. Напротив, пептид обычно обнаруживают в сыворотке крыс, которым имплантировали макрогранулы с островками, со средним уровнем 0.880 0.249 нг/мл на 21 день после имплантации до 0.662 0.160 нг/дл по окончании исследования.

Подопытных животных также проверяют на гликозурию, кетонурию и необходимость введения бикарбоната. Перед имплантацией заметные различия отсутствуют; однако после этого у реципиентов гранул с островками наблюдалось значительно меньше случаев гликозурии (37 из 56 образцов по сравнению с 67 из 81) и кетонурии (20 из 64 по сравнению с 32 из 54). Необходимость в терапии бикарбонатом также значительно снижается (2 по сравнению с 26).

ПРИМЕР 7

Следующие эксперименты демонстрируют, что Seakem агарозные макрогранулы, которые улавливают островки, могут культивироваться in vitro в течение длительного периода времени и все еще оставаться функциональными.

В этих экспериментах участвует группа из 12 диабетических ВВ мышей, которые удовлетворяют тем же критериям, что и крысы в Примере 6, см. выше, а также 23 крысы Wistar-Furth в возрасте 7-ми недель. Эта вторая группа крыс служит в качестве стандартного контроля.

Пятерым из этих крыс Wistar-Furth инъецируют в хвостовую вену 65 мг/кг стрептозотоцина, чтобы вызвать диабет. Когда два раза подряд получают уровни глюкозы в крови >500 мг/дл, крысы начинают получать терапию инсулином, описанную выше.

Животных анестезируют на 20-21 дни после поступления, вводя внутримышечно 0.1 мл/100 г кетамина / (60 мг/мл), ксилазин (6 мг/мл), /бутарфенол (3 мг/мл).

После анестезии все ВВ крысы получают гранулы Seakem агарозы, содержащие островки, как описано выше. Крыс делят на три группы по 4 крысы и дают макрогранулы, которые культивировали, in vitro, в течение 9 недель, 40 недель или 67 недель. Количество введенных макрогранул эквивалентно 1.0х суточной потребности животного в инсулине.

Пять крыс Wistar-Furth получают макрогранулы, которые культивировали, in vitro, в течение 7.8-11.5 недель, в той же дозе, что и ВВ крысы. Это составляет примерно 45-49 макрогранул на крысу Wistar-Furth и 56-60 на крысу ВВ.

За время экспериментов крысы прибавляют в весе в среднем около 75 г. В результате на 97 день после первой имплантации проводят дополнительную имплантацию крысам ВВ. Среднее необходимое крысам количество инсулина перед имплантации составляет 0.0083 ед. инсулина/ г веса тела. Расчеты исходя из этого значения показывают, что для выработки 39.19 ед. инсулина за 24 часа нужно 17 макрогранул, содержащих островки. Как объясняется ниже, вследствие того, что перед второй имплантацией у каждой крысы извлекают 4 гранулы, вводят 21 макрогранулу, которую культивировали в течение 19 недель. Крысы Wistar- Furth не получают второй имплантат.

В данном Примере проводят различные анализы и теми же методами, что и Примере 7.

В дни 201-202 после имплантации проводят полную некроскопию, так же как описано выше.

Средние суточные уровни глюкозы в крови показаны на фигуре 1. После имплантации нормогликемия (100-200 мг/дл) у ВВ крыс восстанавливается примерно в течение одного месяца. После этого у ВВ крыс развивается умеренная гипергликемия (200-400 мг/дл), и этот показатель устойчиво удерживается остальное время эксперимента. Это развитие (появление) умеренной гипергликемии и достижение максимального веса тела происходит одновременно. Вес тела остается постоянным, тогда как уровни глюкозы в крови колеблются между 300- 400 мг/дл в течение остального времени эксперимента. В трех группах крыс, которые получали содержащие островки макрогранулы Seakem Gold, не наблюдается разницы между средними суточными уровнями глюкозы вне зависимости от продолжительности in vitro культивирования гранул.

У крыс Wistar-Furth, у которых был вызван диабет, также визуализируется нормогликемия примерно в течение месяца, после чего наблюдается умеренная гипергликемия.

Выше отмечалось, что второй имплантат вводят крысам ВВ через 97 дней после включения в исследования. Этот второй имплантат не влияет на величины суточных уровней глюкозы в крови.

Свиной С пептид также анализируют и обнаруживают во всех трех группах крыс ВВ. В течение 88 дней эксперимента средний уровень свиного С пептида снижается от 0.6-0.9 нг/мл до 0.2-0.4 нг/мл. На 116 день после введения второго имплантата уровни пептидов повышаются в среднем до 0.3-0.7 нг/мл, причем при некроскопии в перитонеальной жидкости наблюдается повышение в 40 раз.

Тесты с сахарной нагрузкой проводят в течение всего исследования на всех крысах, которым вводят имплантаты макрогранул с островками. Не наблюдают никакой разницы в способности макрогранул, культивированных различное время, отвечать на сахарную нагрузку. А именно уровни глюкозы в крови у всех ВВ крыс примерно удваиваются по сравнению с начальной величиной 100-200 мг/дл. Возврат к исходной гликемии происходит через 120 минут у 10 из 12 животных. Эта реакция аналогична реакции, наблюдаемой у нормальных животных линии Wistar-Furth.

В конечном счете у всех подопытных животных появляется умеренная гипергликемия, но тест с сахарной нагрузкой на 105 день после трансплантации начальный подъем, а затем возврат к начальной (базовой) гликемии. Через 200 дней после трансплантации наблюдается только слабое повышение исходной гликемии после введения глюкозы, а затем возврат к базовой (исходной, начальной) гликемии.

Результаты этих исследований при сравнении их с работой Jain et al. в Transplantation, см. выше, показывают, что содержащие островки агарозные гранулы, в которых агароза представляет собой Seakem Gold, неожиданно оказались лучше, чем гранулы, описанные Jain et al.. Например, Jain et al. сообщают, что 40% подопытных животных умерли к 200 дню, тогда как коэффициент смертности при использовании макрогранул по изобретению равен нулю. Кроме того, результаты, достигнутые в данном описании, получают, используя половинное от описанного в Jain et al. количество макрогранул. Далее в результатах, не представленных конкретно в данном описании, после некроскопии определялись уровни продуцирования инсулина в извлеченных макрогранулах, и они значительно выше, чем уровни инсулина в макрогранулах, извлеченных после некроскопии, в работе Jain et al.

ПРИМЕР 8

Проводят эксперименты по сравнению прочности гранул по изобретению с гранулами, приготовленными из FMC HGT(P) агарозы и покрытыми ею.

В этих тестах гранулы помещают по отдельности в устройство для компрессии (пресс) с верхней и нижней пластиной. Верхнюю пластину опускают вниз со скорость 12 дюймов (304.8 мм) в минуту, и на гранулы оказывают давление до тех пор, пока они не разрушатся. Определяют силу сжатия (максимальное сжатие) в lbf.

Для HGT(P) максимальная величина сжатия находится в интервале 0.714-3.183 lbf, среднее значение 1.958 и стандартное отклонение 0.5444. Для продуктов по изобретению интервал составляет 2.322-6.418 lbf, среднее значение 4.282 и стандартное отклонение 1.096.

Очевидно, что гранулы по изобретению являются механически более прочными, чем гранулы с другими агароза-агарозными покрытиями.

В предыдущих примерах описаны различные признаки изобретения, которые относятся к содержащим секреторные клетки агарозные макрогранулы, покрытые агарозой, где используемая агароза представляет собой агарозу Seakem Gold.

Употребляемый в данном описании термин "макрогранула" ("макросфера", "макробусина") относится к структуре, которая является практически сферической, с диаметром примерно от 4 до примерно 10-12 мм, наиболее предпочтительно около 6-8 мм в диаметре. Толщина второго агарозного слоя предпочтительно составляет около 0.05-5 мм, более предпочтительно около 0.5-5 мм, еще более предпочтительно около 1.0-3 мм и наиболее предпочтительно, около 1.0-2.0 мм. Второй агарозный слой может представлять собой, но не обязательно, слой из Seakem Gold агарозы.

"Макрогранулы" ("макробусины", "макросферы") используют в качестве предпочтительной структуры; однако любая твердая агарозная структура, которая инкапсулирует секреторные клетки и предпочтительно покрыта вторым агарозным слоем, является отличительным признаком изобретения.

Секреторные клетки могут варьироваться (отличаться). Любая клетка или органелла, которая дает заданный секреторный продукт, может быть инкапсулирована. Островки, раковые клетки и стволовые клетки являются примерами типов материалов, которые можно использовать. Каждая гранула может содержать различное число клеточных органелл, что касается островков примерно 50-5000 островков, более предпочтительно примерно 100-2500 островков, еще более предпочтительно примерно 250-1000 и наиболее предпочтительно примерно 475-550 островков. Особенно предпочтительно около 500 островков.

Другие аспекты изобретения будут очевидны специалистам в данной области техники и не требуют дополнительных уточнений.

Употребляемые термины и выражения используются в качестве терминов для описания, а не для ограничения или для исключения любых эквивалентов показанных или описанных отличительных признаков или их элементов, очевидно, что в объеме формулы изобретения возможны различные модификации.

Реферат

Изобретение относится к медицине и касается покрытых агарозой Seakem Gold гранул, содержащих секреторные клетки. Изобретение обеспечивает наименьшее воспаление тканей у реципиентов. 3 н. и 35 з.п. ф-лы, 1 ил., 4 табл.

Формула