Очищенная гепариновая фракция, способ ее получения и содержащая ее фармацевтическая композиция - RU2133253C1

Чертежи

Описание

Настоящее изобретение относится к очищенным гепариновым фракциям и особенно к гепариновым фракциям, очищенным от всех нитрозных соединений, к способу их получения и к содержащей их фармкомпозиции.

В частности, настоящее изобретение относится к гепариновым фракциям, полученным нитрозодеполимеризацией, практически лишенным нитрозосоединений.

Известно, что гепариновые фракции получают путем нитрозной деполимеризации, как описано, например, в европейских заявках на патенты EP-A-0014184 и EP-A-0027089. Некоторые гепариновые фракции, полученные нитрозной деполимеризацией, являются активным началом и используются обычно под названием "гепарины низкого молекулярного веса" или "гепарины с низкой молекулярной массой". Более подробная информация о гепаринах с низким молекулярным весом, используемых в качестве активного начала, об их концентрации и степени сульфатирования, выраженной отношением сульфатов/карбоксилов, изложена в публикации "Гепарины с низкой молекулярной массой" (Фармевропа, октябрь 1991, N 3, стр. 161 - 165), а также в монографии, представленной для Европейской Фармакологии "Гепарины с низкой молекулярной массой", февраль 1993 (PA/PH/Exp. 3T (92) 93). Гепарины с низким молекулярным весом, полученные таким способом и используемые в качестве действующих начал, описаны в заявках на патент или в патентах, опубликованных под номерами Франция-A-2478646, Европа-A-0037319, Европа-Ф-0076279, Европа-A-0181259. Они известны под общими международными названиями (DCI): надропарин кальция, дальтепарин натрия, ревипарин натрия и представляют действующие начала лекарств, выпускаемых в продажу или потенциальных. А именно, ревипарин натрия представляет действующее начало лекарства КЛИВАРИН^®, выпускаемого в продажу в Германии. Другие гепарины с низким молекулярным весом, полученные нитрозной деполимеризацией, также присутствуют в лекарствах, имеющихся в распоряжении Медицинской корпорации в Германии (МОНО-ЕМБОЛЕКС^® NM), в Австрии (САНДОПАРИН^® и TРОПАРИН^®) и в Швейцарии (САНДОПАРИН^®).
Способ нитрозной деполимеризации включает образование нелетучих нитрозосоединений (обозначаемых ниже соединениями N-NO или просто N-NO) путем присоединения группы -NO к нитрозируемым компонентам, присутствующим в гепарине или в его фракциях или фрагментах. Хотя количество нитрозосоединений, присутствующих во фракциях гепарина, очень небольшое и не наносит ущерба при их использовании в качестве медикаментов, все же получение этих продуктов в промышленном масштабе связано с манипуляцией с большим количеством порошков. Следовательно, полное или практически полное удаление нитрозосоединений улучшило бы характеристики гепаринов с низким молекулярным весом, которые используются в качестве действующих начал.

В случае гепаринов с низким молекулярным весом, у которых среднемолекулярная масса небольшая, как например, у продукта, который ниже будет назван СУ 222 (среднемолекулярная масса составляет от 1700 Da до 3000 Da), количество нитрозосоединений может быть выше количества этих соединений в продуктах, имеющих более высокую молекулярную массу. Этот продукт отвечает определению продуктов, заявленных в заявках на патенты и в патентах Франция-2478646 и в Европейском патенте 0037319, и может быть получен по описанным в них способам.

Следовательно, в высшей степени желательно, по изложенным выше причинам, иметь гепариновые фракции, полученные нитрозной деполимеризацией, практически лишенные нитрозосоединений.

Известен способ удаления нитратов из питьевой воды с одновременной стерилизацией воды путем облучения ультрафиолетовыми лучами при длине волны ниже 200 нм, преимущественно 185 нм, и при щелочном pH (см. статью P.PRINCZ и др. , Water Supply 1988, 6, 199-205).

Однако, если облучение ультрафиолетовыми лучами применить к биологически активному продукту, то невозможно предвидеть пагубного влияния на его биологические и/или физико-химические свойства.

Заявитель разработал способ очистки гепариновой фракции от нитрозосоединений с использованием ультрафиолетового облучения, который позволяет сохранить биологические и физико-химические свойства.

Таким образом, по одному из аспектов, настоящее изобретение относится к гепариновым фракциям, полученным нитрозной деполимеризацией, в которых общее количество нитрозосоединений ниже или равно 500 частей на биллион, преимущественно, ниже или равно 150 ч/блн и даже ниже или равно 100 ч/блн, в частности, равно 50 ч/блн, причем количество 50 ч/блн представляет собой минимально определяемое количество при настоящем уровне знаний. Вышеназванные фракции представляют собой преимущественно гепарины с низким молекулярным весом и имеют остаточное содержание нитрозосоединений, равное или ниже, чем в природных гепаринах.

Предпочтительно, гепарин с низким молекулярным весом, очищенный согласно изобретению, полученный нитрозной деполимеризацией гепарина природного происхождения, преимущественно, происходящего из кишечной слизи свиньи, из легкого быка или из тканей или органов различных животных, имеет следующие характеристики: среднемолекулярная масса ниже 8000 Da; по меньшей мере, 60% всех компонентов имеет молекулярную массу ниже 8000 Da; активность антифактора Xa не ниже 60 межд. ед./мг; отношение активности антифактора Xa/антифактора 11a не ниже 1,5; количество всех нитрозосоединений равно или ниже 500 ч/блн, преимущественно ниже 150 ч/блн, еще предпочтительнее ниже 50 ч/блн, и находится в виде фармацевтически приемлемой соли, преимущественно соли натрия или кальция.

Активность антифактора Xa и отношение активности антифактора Xa/антифактора 11a определяют по сравнению с международным эталоном гепаринов низкого молекулярного веса; ссылка OMS 1-85/600.

Вышеназванная молекулярная масса определяется по методу, описанному в монографии, представленной для Европейской Фармакопеи (см. ссылку выше).

Под выражением "лишенные всех нитрозосоединений" понимают фракции гепарина низкого молекулярного веса, получаемые нитрозной деполимеризацией и содержащие не больше 500 ч/блн, или не больше 150 ч/блн, особенно не больше 100 ч/блн, в том числе не больше 50 ч/блн всех нитрозосоединений. Под термином "компоненты" понимают все молекулы, которые входят в состав гепарина низкого молекулярного веса.

Гепарины низкого молекулярного веса, лишенные всех нитрозосоединений, согласно изобретению, в основном состоят из 2-0-сульфо-α-L-идопиранозуроновой структуры с невосстанавливающимся концом, из структуры 6-0-сульфо-2,5-ангидро-D-маннитола с восстанавливающимся концом и имеют степень сульфатирования, которая не отличается значительно от степени сульфатирования нефракционированного гепарина природного происхождения. Эта степень сульфатирования составляет между 2 и 2,5, преимущественно, между 2,0 и 2,3.

Предпочтительные гепарины низкого молекулярного веса, согласно изобретению, имеют такое распределение молекулярных масс, при котором 90% их компонентов имеют молекулярную массу между 2000 Da и 10000 Da, преимущественно, между 2000 Da и 9000 Da , предпочтительно, между 2000 и 8000 Da. Кроме того, эти гепарины имеют преобладающую молекулярную массу между 3000 Da и 6000 Da, преимущественно, между 4000 Da и 5000 Da.

Другой предпочтительный гепарин с низким молекулярным весом имеет преобладающую молекулярную массу между 1700 Da и 3000 Da, при этом 90% всех компонентов имеет распределение молекулярных масс между 1000 Da и 8000 Da.

Термином "преобладающая молекулярная масса" обозначают молекулярную массу компонентов гепарина, которая соответствует пику хроматографического профиля, полученного эксклюзивной хроматографией, используя детектор УФ при λ = 205 нм.

Очищенный продукт СУ 22, представляющий собой соль натрия деполимеризованного гепарина, полученного деполимеризацией с азотистой кислотой гепарина природного происхождения, выделенного из слизи кишечника свиньи, имеет преобладающую молекулярную массу, распределенную между 1700 Da и 3300 Da, причем 90% компонентов имеют молекулярную массу, распределенную между 1000 Da и 8000 Da; 2-0-сульфо-α-L- идопиранозуроновую структуру с невосстанавливающимся концом и структуру 6-0-сульфо-2,5-ангидро-D-маннитола с восстанавливающимся концом у большинства компонентов; степень сульфатирования приблизительно 2,1; активность антифактора Xa 60-80 межд.ед/мг; активность антифактора 11a не выше 25 межд.ед./мг, более точно 14-15 межд.ед./мг; количество всех нитрозосоединений ниже или равно 100 ч/блн (1•10^-7 мг нитрозосоединений на 1 кг продукта), преимущественно, ниже или равно 50 ч/блн (5 • 10^-8 мг нитрозосоединений на мг продукта), этот продукт представляет собой фракцию гепарина, предпочитаемую по настоящему изобретению.

Фракции гепарина, лишенные всех нитрозосоединений (гепарины низкого молекулярного веса), настоящего изобретения получают по способу, описанному ниже.

Таким образом, предложен способ получения гепариновых фракций, содержащий не больше 500 ч/блн всех нитрозосоединений, заключающийся в том, что водный раствор гепариновой фракции, полученной нитрозной деполимеризацией, подвергают облучению ультрафиолетовыми лучами.

В качестве исходного продукта можно использовать любую гепариновую фракцию, полученную нитрозной деполимеризацией. Подобный исходный продукт содержит обычно общее количество нитрозосоединений между 1000 и 20000 ч/блн.

Определение всех нитрозосоединений осуществляют по методу B.Pignatelli и др. , описанному в Analyst, сентябрь 1989, 114, стр. 1103-1108 и в Analyst, июль 1987, 112, стр. 945-949, применяемому к гепарину и его фракциям, преимущественно к гепаринам низкого молекулярного веса.

Способ настоящего изобретения можно проводить на гепарине с низким молекулярным весом фармацевтического качества, растворенном в воде, или же во время промышленного изготовления после стадии нитрозной деполимеризации и перед выделением чистого продукта фармацевтического качества. Преимущественно используют гепарин с низким молекулярным весом фармацевтического качества.

Таким образом, в качестве сырья для способа настоящего изобретения можно использовать любой гепарин низкого молекулярного веса, полученный нитрозной деполимеризацией. Чтобы получать максимальную эффективность способа, выгодно использовать растворы деполимеризованного гепарина, лишенные суспендированных микрочастиц. Присутствие этих микрочастиц может быть вызвано плохим растворением деполимеризованного гепарина, или различными примесями, или же остатками реактивов, используемых при деполимеризации или при очистке. Следовательно, различные растворы деполимеризованного гепарина подвергают преимущественно предварительному фильтрованию.

Способ настоящего изобретения является необыкновенно эффективным и гибким, так как он позволяет удалять нитрозосоединения простым, быстрым и безопасным методом. Кроме того, способ изобретения не влечет за собой никакого изменения в структуре гепариновой фракции, биологические свойства и физико-химические характеристики которой остаются строго идентичными.

Способ настоящего изобретения может быть осуществлен, подвергая водный раствор гепариновой фракции, полученной в результате нитрозной деполимеризации, преимущественно гепарина низкого молекулярного веса с концентрацией 5 - 15 мас./об.%, облучению УФ при длине волны от 180 до 350 нм, преимущественно, 254 нм, при температуре от 5 до 50^oC, преимущественно, от 15 до 35^oC, преимущественно, при комнатной температуре.

Величина pH раствора слегка кислая или слегка щелочная, а именно: между 3 и 8, преимущественно, между 5 и 8.

Время облучения зависит от используемой установки для облучения, от мощности излучения и от количества удаляемых нитрозосоединений, присутствующих в гепариновой фракции. Оно составляет приблизительно от 2 до 30 мин, хотя после 9 - 15 мин обычно получается почти полная очистка.

В качестве установки для облучения УФ можно предусмотреть или статическую установку или динамическую установку, позволяющую растворам гепариновых фракций циркулировать вокруг источника ультрафиолетового излучения. Предпочитают динамические установки. В этом последнем случае источник ультрафиолетового излучения может быть присоединен к цилиндрической трубе (аппарат типа "закрытый") или к каналу (аппарат типа "открытый"). В качестве аппарата "закрытого" типа можно использовать стерилизатор UV JRI-50 (КАТАДИН) или любой другой эквивалентный аппарат.

Фиг. 1 представляет в разрезе аппарат "закрытого" типа. Этот аппарат состоит из лампы ультрафиолетового излучения (1), вокруг которой установлен кварцевый кожух (2). Растворы, содержащие гепарины низкого молекулярного веса, циркулируют вокруг лампы ультрафиолетового излучения, защищенной кварцевым кожухом (поток циркулирующей жидкости (3)). Их вводят через вход (4), расположенный на уровне одного из концов лампы ультрафиолетового излучения, выход (5) расположен на другом конце лампы ультрафиолетового излучения.

Когда используют динамическую установку, скорость растворов гепариновой фракции, с которой они циркулируют вокруг источника ультрафиолетового излучения, должна быть отрегулирована таким образом, чтобы получить продолжительность излучения, необходимую для удаления нитрозосоединений. Регулируемыми параметрами являются диаметр потока циркулирующей жидкости, размер и/или мощность источника ультрафиолетового излучения, концентрация гепариновой фракции в водном растворе и количество нитрозных удаляемых соединений, содержащееся в этой фракции.

Гепариновая фракция или преимущественно гепарин низкого молекулярного веса, лишенная всех нитрозосоединений, полученная таким образом, может быть рекуперирована традиционными методами.

Когда в качестве исходного продукта используют гепарин низкого молекулярного веса фармацевтического качества, достаточно растворить продукт в воде, установить величину pH раствора между 3 и 8, преимущественно между 5 и 8, и обработать этот раствор согласно способу настоящего изобретения.

В качестве исходного продукта можно использовать также нефракционированный гепарин природного происхождения, целесообразно в форме соли, а именно: натриевый гепарин, преимущественно получающийся из кишечной слизи свиньи. В этом случае, способ настоящего изобретения заключается в еще одной стадии получения конечного продукта, лишенного всех нитрозосоединений, осуществляемый после нитрозной деполимеризации. Этот способ представляет собой другой аспект настоящего изобретения.

Согласно этому аспекту настоящего изобретения предложен способ получения гепарина низкого молекулярного веса, имеющего общее количество нитрозосоединений, ниже или равное 500 ч/блн, преимущественно, ниже или равное 150 ч/блн, преимущественно, ниже или равное 100 ч/блн, еще предпочтительнее, ниже или равное 50 ч/блн, отличающийся тем, что (а) обрабатывают нефракционированный гепариновый раствор натрия в воде с концентрацией 5 - 15% масса/объем раствором щелочного нитрита, преимущественно нитрита натрия из расчета от 15 до 69 г нитрита на 1 кг использованного гепарина, в присутствии соляной кислоты с величиной pH от 1 до 5, преимущественно, от 1,5 до 4, в течение от 20 до 50 мин и подвергают полученный таким путем продукт восстановлению, преимущественно в щелочной среде при помощи 5-20 г борогидрида натрия на 1 кг исходного гепарина, устраняют избыток борогидрида натрия соляной кислотой, нейтрализуют, в случае необходимости, реакционную среду и осаждают этанолом, затем, в случае необходимости, подвергают полученный таким путем гепарин низкого молекулярного веса одному или нескольким спиртовым фракционированиям; (б) подвергают полученный таким путем раствор действию ультрафиолетового излучения; (в) производят, в случае необходимости, очистку хроматографией и выделяют деполимеризованный натриевый гепарин, очищенный и лишенный всех нитрозосоединений, осаждением хлористым натрием и этанолом и, в случае необходимости; (г) превращают натриевую соль в другую фармацевтически приемлемую соль, преимущественно соль кальция.

По предпочтительному аспекту, настоящее изобретение относится к способу получения очищенного продукта СУ 222, представляющего собой натриевую соль деполимеризованного гепарина, полученного деполимеризацией с азотистой кислотой гепарина природного происхождения, извлеченного из кишечной слизи свиньи, имеющего преобладающую молекулярную массу, распределенную между 1700 Da и 3300 Da; 90% компонентов имеют молекулярную массу между 1000 Da и 8000 Da; 2-0-сульфо-α-L-идопиранозуроновую структуру с невосстанавливающимся концом и структуру 6-0-сульфо-2,5-ангидро-D-маннитола с восстанавливающимся концом у большинства своих компонентов; степень сульфатирования приблизительно 2,1; активность антифактора Xa 60-80 межд.ед./мг; активность антифактора 11a не выше 25 межд.ед./мг; содержание нитрозосоединений ниже или равно 100 ч/блн, преимущественно, ниже или равно 50 ч/блн.

Вышеназванный способ отличается тем, что (а) обрабатывают водный гепариновый раствор натрия природного происхождения, не разделенный на фракции, соляной кислотой и количеством щелочного нитрита, составляющим от 3,5 до 4 вес. % по отношению к использованному гепарину, поддерживая кислую величину pH и следя за присутствием азотистых ионов до отрицательной реакции, затем подщелачивают, восстанавливают борогидридом натрия и выделяют из нейтральной среды деполимеризованный продукт путем осаждения этанолом, затем (б) пропускают водный раствор полученного таким путем продукта при pH приблизительно 7 под установкой ультрафиолетового излучения при 254 нм, вводят затем полученный таким путем раствор в верхнюю часть анионообменной колонки и, после промывки колонки водой и при pH приблизительно 7, рекуперируют конечный продукт осаждением хлористым натрием и этанолом.

На стадии (а) используют в качестве щелочного нитрита нитрит натрия в вышеописанных пропорциях.

Преимущественно, на стадии (б) способа установка ультрафиолетового излучения снабжена лампой 16 Вт, и время выдержки под действием ультрафиолетового излучения при 254 нм составляет приблизительно 9-15 минут. Предпочитают динамическую установку ультрафиолетового излучения и особенно аппарат "закрытого" типа. Выгодная концентрация растворов, подвергаемых ультрафиолетовому излучению, составляет 8-12 мас./об.%.

Настоящее изобретения относится также к фармацевтической композиции, содержащей в качестве действующего начала очищенную гепариновую фракцию, лишенную всех нитрозосоединений, преимущественно очищенный гепарин низкого молекулярного веса, лишенный всех нитрозосоединений, который описан выше.

В композиции по настоящему изобретению гепариновая фракция находится в форме лиофилизата или в виде раствора для подкожной инъекции, в стерильном биологически приемлемом растворителе, таком как вода, или в физиологическом растворе, в ампулах, в пузырьках, в шприцах, предварительно наполняемых, или в приспособлениях для самоинъекции типа "перо". Каждая единичная доза фармацевтических составов может содержать от 50 до 50000 (международных единиц) антифактора Xa.

Гепариновые фракции по изобретению можно вводить также путем внутривенных инъекций одни или в смеси с другими действующими началами. Их можно также вводить путем распыления в нос или в легкие.

Фармацевтический состав, предпочитаемый по настоящему изобретению, содержит в качестве действующего начала продукт СУ 222, лишенный всех нитрозосоединений, в единичной дозе, содержащей от 10 до 5000 мг СУ 222 в форме соли натрия.

Как было указано выше, определение всех нитрозосоединений по методу B. Pignatelly и др., описанному в Analyst, сентябрь 1979, 114, стр. 1103-1108 и в Analyst, июль 1987, 112, стр. 945-949, применяемому к гепарину и к гепарину низкого молекулярного веса.

Аналитический метод.

Анализируемые продукты представляют преимущественно порошок, следовательно, в случае определения всех нитрозосоединений, присутствующих в растворе, сначала производят лиофилизацию вышеназванного раствора и затем анализируют лиофилизованный образец.

1. - Реактивы
На 100 мг гепариновой фракции использовали следующие реактивы: этилацетат, обработанный сульфаминовой кислотой, концентрация 20 мас./об.% (раствор 200 г сульфаминовой кислоты в 1000 мл этилацетата, перемешиваемый в течение 3 дней и фильтруемый на бумаге перед использованием); 15%-ная бромистоводородная кислота в уксусной кислоте (маленькие флаконы янтарного цвета с полиэтиленовой пробкой, содержащие 5 мл 30%-ной бромистоводородной кислоты, закрытые в атмосфере азота и хранимые в темноте. В момент применения добавляют 5 мл чистой уксусной кислоты, перемешивают и хранят в маленьком контейнере в темноте. Используют 1 флакон на серию дозировок); 95%-ный формамид, обработанный сульфаминовой кислотой, концентрация 5 мас./об.% (раствор 1 г сульфаминовой кислоты в 20 мл формамида, содержащий 5% очищенной воды).

2. Приготовление растворов-эталонов и анализируемого образца.

Раствор-эталон N-нитрозо-ди-н-пропиламина (NДПА).

Впрыскивают 78,62 г чистого этанола во флакон ISOPAC Сигма, содержащий 1 г N-нитрозо-ди-н-пропиламина, через мембрану. Концентрация составляет 10000 ч/млн NДПА (3379 ч/млн N-NO). Затем разбавляют на 1/100 чистым этанолом и разливают аликвотными частями по 0,5 мл в маленькие закрытые крышками флаконы. Концентрация составляет 100 ч/млн NДПА. Хранят в темноте и при +4^oC.

^*Раствор-эталон с низкой степенью разбавления: в момент применения производят разбавление на 1/100 в этаноле, затем на 1/17 в обработанном формамиде. Концентрация будет 0,0588 ч/млн NДПА или 19,9 ч/млн N-NO.

^*Раствор-эталон со средней степенью разбавления: в момент применения производят разбавление на 1/61 в этаноле, затем на 1/11 в обработанном формамиде. Концентрация будет 0,149 ч/млн NДПА или 50,4 ч/млн N-NO.

^*Раствор-эталон с высокой степенью разбавления: в момент применения производят разбавление на 1/10 в этаноле, затем на 1/10 в обработанном формамиде. Концентрация будет 1 ч/млн NДПА или 338 ч/млн N-NO.

Анализируемый образец.

Сушат образцы гепариновой фракции 12 часов при 60^oC в вакууме, в атмосфере фосфорного ангидрида. Растворяют 100 мг гепариновой фракции в 1 мл обработанного формамида и перемешивают 30 минут в вибрационном смесителе.

3. Используемая аппаратура
Используемая аппаратура показана на фиг. 2.

Аппарат состоит из шаровидного сосуда объемом 500 мл из жаростойкого стекла (1) с установленным над ним холодильником двойного действия (2), охлаждаемого до -15^oC. Холодильник соединен с тремя барботерами, установленными последовательно (3), содержащими каждый 30 мл 30%-ной гидроокиси натрия. Эти последние соединены с двумя охлаждаемыми ловушками, установленными последовательно, в одной находится этанол в расплавленном состоянии при -120^oC (4), а в другой - изопентан в расплавленном состоянии при -160^oC (5).

Ловушки соединены с химическим люминесцентным детектором (TEA) модель 610 (Thermedics Detection INC.) или с аналогичным устройством (6). Детектор присоединен к интегратору/самописцу (7).

Шаровидный сосуд снабжен, с одной стороны, пробкой со сквозным отверстием (8), позволяющим вводить трубку, через которую подают поток аргона, а с другой стороны, винтовым притиром, снабженным пробкой, что позволяет фиксировать мембрану типа CPQ (9), через которую вводят образец. Поток аргона и вакуум, создаваемый вакуум-насосом TEA, подают газы к TEA.

4. Рабочий протокол.

4.1. Регулирование детектора.

TEA регулируют по инструкциям изготовителя, чтобы получать максимальные чувствительность и воспроизводимость.

За час перед дозировкой открывают кислород, устанавливают давление 2 бар, регулируют расход до 0,02 по расходомеру TEA 610 (Thermedics DetectionINC).

4.2. Приготовление ловушек со щелочью натрия.

Наполняют каждую ловушку 30 мл 30%-ной гидроокиси натрия.

4.3. Приготовление холодных ловушек.

Ловушка при - 120^oC: в сосуд Дьюара, содержащий 250 мл этанола, наливают, перемешивая при помощи деревянной шпатели, жидкий азот до получения пасты.

Ловушка при -160^oC: в сосуд Дьюара, содержащий 250 мл изопентана, медленно наливают, перемешивая при помощи деревянной шпатели, жидкий азот до получения пасты.

Две ловушки из стекла размещены в своих соответствующих сосудах Дьюара и присоединены к системе циркуляции.

4.4. Дегидратация системы шаровидный сосуд-холодильник.

Нагревают до флегмы 50 мл этилацетата в течение 1 часа в атмосфере аргона без присоединения к TEA.

4.5. Реакция и дозировка.

В новый чистый и сухой шаровидный сосуд, снабженный мембраной, вводят 30 мл обработанного этилацетата и устанавливают его под холодильником (криостат должен быть включен за 2 часа до - 15^oC), устанавливают нагревательный шаровидный сосуд и нагревают (позиция 4). Присоединяют трубку для аргона, регулируют расход до 0,1 л/мин и контролируют герметичность всей цепи. Только присоединение к TEA остается открытым, чтобы избежать избыточного давления. Когда этилацетат нагрет до состояния флегмы, очень осторожно создают вакуум и одновременно ограничивают подачу к TEA. Вакуум устанавливается во всей цепи и достигает 2-4 мм рт. ст., когда система находится в равновесии. Устанавливают нулевой уровень TEA при 10% полной шкалы интегратора/самописца.

Через мембрану последовательно впрыскивают 0,5 мл очищенной воды, 2 мл разбавленной бромистоводородной кислоты, затем снова 2 мл разбавленной бромистоводородной кислоты, между каждым впрыскиванием проверяют возврат на базовую линию интегратора/самописца. После вспрыскивания реактивов в шаровидный сосуд ожидают возврата на базовую линию и впрыскивают 50 мкл эталона или образца. Между каждым впрыскиванием ожидают возврата на базовую линию. При дозировках используют 5 образцов на 2 эталона и действуют таким образом, чтобы полная реализация способа продолжалась не более 60 минут.

4.6.- Оценка всех нитрозных соединений.

Количество N-NO в ч/блн, вычисленное по формуле

Следующие примеры иллюстрируют изобретение.

Пример 1. Получение очищенного надропарина кальция, имеющего содержание всех нитрозированных производных ниже 100 ч/блн.

Стадия А. Деполимеризация и фракционирование этанола.

В реакторе растворяют 20 кг гепарина натрия, получающегося из кишечной слизи свиньи, в очищенной воде до конечной концентрации около 10,3 мас./об. %. Доводят величину pH раствора до 2,5 при помощи концентрированной соляной кислоты.

Вводят в реактор 572 г нитрита натрия, поддерживая величину pH при 2,5 посредством концентрированной соляной кислоты.

За реакцией деполимеризации следят при помощи индикаторной бумаги с крахмалосодержащим йодистым калием. Реакцию заканчивают, когда тест на бумагу отрицательный. Доводят величину pH реакционного раствора до 10 при помощи концентрированной гидроокиси натрия, затем добавляют 200 г борогидрида натрия. Перемешивают в течение 15 часов, затем устанавливают pH между 4 и 3,5 при помощи концентрированной соляной кислоты, чтобы разрушить избыток борогидрида. Затем доводят pH до 7 добавлением концентрированной гидроокиси натрия. Потом осаждают, добавляя 2 объема этанола на 1 объем водного раствора. Производят декантацию, затем удаляют водно-спиртовую надосадочную жидкость. Растворяют осадок в 400 литрах очищенной воды. Добавляют к этому раствору хлористый натрий до получения электрической проводимости около 20000 мкS/см. Затем доводят pH до величины около 4 при помощи концентрированной соляной кислоты и добавляют к раствору при перемешивании 1 объем абсолютного этанола. Производят декантацию в течение приблизительно 60 часов, затем удаляют водно-спиртовую надосадочную жидкость. Таким путем получают надропарин в форме соли натрия.

Потом растворяют осадок в очищенной воде до получения раствора с концентрацией около 18 мас./об.% на основе исходного количества гепарина натрия, доводят величину pH до 7 при помощи концентрированной гидроокиси натрия. Затем фильтруют раствор в установке, снабженной фильтрующими элементами с пористостью 0,2 мкм. Отбирают из фильтрованного раствора, содержащего надропарин натрия, образец, который не будет обработан по способу, описанному на стадии В (обработка ультрафиолетовыми лучами). Этот образец называют контрольным.

Стадия B. Обработка ультрафиолетовыми лучами.

Для обработки ультрафиолетовыми лучами используют трубку Катадина JRI-50 с полезным объемом 750 мл. Рабочая длина волны обработки 254 нм. Предварительно устанавливают при помощи перистальтического насоса и очищенной воды пропускную способность (4800 мл/ч), адекватную тому, чтобы при прохождении без рециркуляции полное время выдержки под действием ультрафиолетовых лучей составило приблизительно 9 минут. Затем вводят обрабатываемый раствор надропарина натрия и промывают линию очищенной водой до полной рекуперации обработанного продукта в сборнике, который находится на выходе из трубки Катадина JRI-50.

Стадия C. Очистка хроматографией и превращение в кальциевую соль.

Очищают раствор надропарина, полученный на предыдущей стадии, на анионовой колонке (0,5 л/кг используемого гепарина натрия). Устанавливают электрическую проводимость собранных эффлюентов на уровне 10000-20000 мкS/см с помощью хлористого натрия и добавляют затем 1,5 объема этанола. Проводят декантацию приблизительно 41 час, затем удаляют надосадочную жидкость.

Растворяют осадок в очищенной воде (K=18 мас./об.% на основе используемого количества гепарина натрия) и добавляют гексагидратированный хлорид кальция (9,63 г/г введенного гепарина натрия). Затем производят осаждение этанолом, добавляя 1,5 объема этанола. Повторяют стадию солеобразования при помощи гексагидратированного хлорида кальция и стадию очистки путем осаждения этанолом. Полученный осадок сушат при температуре, не превышающей 60^oC.

Таким путем получают партию 1.

Контрольную партию, полученную на стадии A, обрабатывают также по способу, описанному на этой стадии C, и выделяют контрольную партию надропарина кальция.

На образце партии 1 и партии "контрольного образца" надропарина кальция осуществляют физико-химические анализы и дозировки для определения биологической активности.

Различные результаты даны в табл. I и II (см. табл. I и II в конце описания)
Результаты, приведенные в табл. I и II, показывают, что обработка ультрафиолетовыми лучами не вызывает никакого ухудшения надропарина. В самом деле, различные физико-химические и биологические характеристики партии I, такие как хроматографический профиль продукта, количество различных примесей, активность антифактора Xa и активность антифактора 11a идентичны характеристикам контрольного образца, не обработанного ультрафиолетовыми лучами, за одним исключением. Количество всех нитрозосоединений необработанного контрольного образца составляет приблизительно в 60 раз выше, чем количество всех нитрозосоединений партии I, которая была подвергнута обработке ультрафиолетовыми лучами.

Кроме того, результаты анализов методом электронного парамагнитного резонанса подтверждают, что обработка ультрафиолетовыми лучами не вызывает выделения свободных радикалов.

Пример 2. Получение СУ 222 натриевой соли, имеющей общее количество нитрозосоединений ниже 50 ч/блн.

Стадия A. Деполимеризация.

В реакторе растворяют 250 г гепарина натрия, получающегося из кишечной слизи свиньи, в очищенной воде с получением конечной концентрации около 10,3 мас. /об. %. Доводят pH до 2,5 при помощи концентрированной соляной кислоты. Вводят в реактор 9,49 г нитрита натрия, поддерживая pH при 2,5. Следят за реакцией деполимеризации при помощи теста с индикаторной бумагой с крахмалосодержащим йодистым калием. Реакцию заканчивают, когда тест с бумагой отрицательный. Устанавливают величину pH реакционного раствора между 10 и 10,5 при помощи концентрированной гидроокиси натрия, добавляют 2,5 г борогидрида натрия. Оставляют смесь при перемешивании в течение 15 часов, затем регулируют величину pH между 3,5 и 4 при помощи концентрированной соляной кислоты, чтобы разрушить избыток борогидрида. Доводят величину pH до 7 введением концентрированной гидроокиси натрия. Затем осаждают, добавляя 2 объема этанола на 1 объем раствора. Производят декантацию осадка и удаляют надосадочную жидкость. Таким путем получают СУ 222 в форме натриевой соли. Полученный продукт содержит между 3000 и 10000 ч/блн всех нитрозосоединений (результаты 3-х препаратов).

Стадия B. Обработка ультрафиолетовыми лучами.

Растворяют продукт, полученный на предшествующей стадии, в очищенной воде для получения конечного раствора с концентрацией приблизительно 10% масса/объем на основе введенного количества гепарина натрия, доводят pH до 7 при помощи соляной кислоты или гидроокиси натрия. Отрегулировав пропускную способность насоса, пропускают полученный таким путем раствор под установкой ультрафиолетового излучения при 254 нм (система Катадина JRI-50, снабженная лампой 16 Вт). Продолжительность экспозиции под действием ультрафиолетовых лучей составляет от 9 до 15 минут.

Стадия C. Очистка хроматографией и конечные осаждения.

Очищают раствор, полученный после обработки ультрафиолетовыми лучами, на хроматографической колонке, содержащей минимально 2 л анионообменной смолы на 1 кг введенного гепарина натрия. Устанавливают электрическую проводимость собранных эффлюентов на уровне 30-35 мS/см при помощи хлористого натрия и доводят их pH до 7 при помощи соляной кислоты. Затем добавляют 2 объема этанола на 1 объем водного раствора. Производят декантацию осадка и удаляют надосадочную жидкость. Растворяют осадок в очищенной воде, чтобы получить конечный раствор с концентрацией 20% масса/объем на основе исходного количества гепарина натрия, доводят электрическую проводимость раствора до 30-35 мS/см при помощи хлористого натрия и величину pH устанавливают между 7-7,5 при помощи концентрированной соляной кислоты или концентрированной гидроокиси натрия. Затем осаждают раствор 2 объемами абсолютного этанола и производят декантацию. Собирают осадок, промывают его этанолом и сушат при температуре, не превышающей 60^oC. Таким путем получают СУ 222, чистый, определяемый как натриевая соль деполимеризованного гепарина, полученного деполимеризацией нитрокислотой гепарина кишечной слизи свиньи, имеющего преобладающую молекулярную массу, распределенную между 1700 Da и 3300 Da, из которых 90% компонентов имеют молекулярную массу между 1000 Da и 8000 Da; 2-0-сульфо-α-L-идопиранозуроновую структуру на невосстанавливающемся конце и структуру 6-0-сульфо-2,5-ангидро-D-маннитола на восстанавливающемся конце большинства своих компонентов; степень сульфатирования приблизительно 2,1; активность антифактора Xa 60-80 межд.ед./мг; активность антифактора 11a не выше 25 межд. ед./мг, особенно 10-15 межд.ед./мг; содержание нитрозосоединений ниже 50 ч/блн.

Реферат

Изобретение может быть использовано в медицине и относится к гепаринам низкомолекулярной массы, полученным нитрозной деполимеризацией гепарина природного происхождения и содержащим нитрозосоединения в количестве, менее или равном 5•10^-7 мг на мг продукта. Для удаления нитрозосоединений водный раствор гепарина низкомолекулярной массы обрабатывают ультрафиолетовыми лучами с длиной волны от 180 до 350 нм при температуре между 5 и 50^oC и при pH между 3 и 8. При получении очищенного гепарина низкомолекулярной массы водный раствор натриевой соли гепарина природного происхождения концентрацией 5-15 мас./об.% обрабатывают раствором нитрита щелочного металла из расчета 1,5-6,9 мас. % нитрита по отношению к взятой соли гепарина. Указанную реакцию проводят в присутствии соляной кислоты при pH от 1 до 5 в течение времени от 20 до 50 мин до появления отрицательного теста на нитроионы. Полученный продукт восстанавливают добавлением боргидрида натрия в количестве 0,5-2,0 мас.% количества взятой соли гепарина. Избыток боргидрида разрушают соляной кислотой. Полученную реакционную среду нейтрализуют и осаждают из нее этанолом гепарин низкомолекулярной массы в виде натриевой соли. Водный раствор полученной натриевой соли обрабатывают ультрафиолетовыми лучами. При этом при получении продукта, содержащего нитрозосоединения в количестве, менее или равном 5•10^-8 мг на мг продукта, обработанный ультрафиолетовыми лучами раствор направляют дополнительно на анионообменную колонку. Указанную колонку промывают водой при pH приблизительно 7. Рекуперируют конечный продукт осаждением хлористым натрием и этанолом. Фармацевтическая композиция на основе очищенного гепарина низкомолекулярной массы обладает антитромбозной активностью. Способ очистки гепарина низкомолекулярной массы от нитрозосоединений с помощью ультрафиолетового облучения позволяет сохранить его биологические и физико-химические свойства. 5 с. и 12 з.п. ф-лы, 2 ил., 2 табл.

Формула