Способ кормления животного - RU2721269C2

Чертежи

Описание

ПЕРЕКРЕСТНАЯ ССЫЛКА НА РОДСТВЕННЫЕ ЗАЯВКИ

Данная международная патентная заявка под названием «Способ кормления животного» испрашивает приоритет и включает посредством ссылки в полном объеме следующие патентные заявки: предварительная патентная заявка США № 62/115412 под названием «Способ кормления животного», поданная 12 февраля 2015 г. M. Hilbert и др. и закрепленная за CAN Technologies, Inc. (номер в реестре N00255USP3), предварительная патентная заявка США № 62/031977 под названием «Способ кормления животного класса птицы», поданная 1 августа 2014 г. M. Hilbert и др. и закрепленная за CAN Technologies, Inc. (номер в реестре N00255USP2); и предварительная патентная заявка США № 62/005084 под названием «Способ кормления животного класса птицы», поданная 30 мая 2014 г. M. Hilbert и др. и закрепленная за CAN Technologies, Inc. (номер в реестре N00255USP1).

ОБЛАСТЬ ТЕХНИКИ

Настоящее изобретение в целом относится к кормлению животного. Аспекты настоящего изобретения, в частности, относятся к кормлению моногастричного животного рационом, содержащим витамин Е с источником полифенолов.

УРОВЕНЬ ТЕХНИКИ

Для получения яиц в комплексных племенных бройлерных птицефермах яйца высиживаются в своем собственном инкубаторе, и выращивается потомство до убоя. Доходы в значительной степени зависят от количества производимого мяса птицы за вычетом расходов, связанных с кормлением племенных бройлеров, находящихся в инкубаторе, кормлением потомства, и других расходов (например, содержание птицы).

Нормальный рост и развитие эмбриона зависит от запаса всех необходимых питательных веществ внутри яйца. Известно, что запас питательных веществ в яйце возникает посредством питания родительского стада и метаболизма племенной птицы. Если можно внести изменения в рацион родительского стада, которые повлияют на развитие эмбриона и рост потомства, то это может быть гораздо более экономически эффективно, чем изменения рациона потомства для повышения продуктивности. Например, заявка на европейский патент № EP2358214 под названием «Применение кантаксантина и/или 25-ОН-D3 для улучшения вылупляемости птицы», закрепленная за DSM IP Assets B.V., относится к применению кантаксантина для улучшения вылупляемости птицы.

Один племенной бройлер может производить около ста цыплят-бройлеров в год. Таким образом, небольшое улучшение в продуктивности потомства за счет изменения в питании племенной птицы может оказать существенное влияние на выход, полученного в результате потомства.

Аналогично успешность и прибыльность животноводческих ферм по разведению крупного рогатого скота, свиней, овец и многих других животных в значительной мере зависит от способности производить большое количество жизнеспособного потомства. Следовательно, требуется повысить уровень рождаемости, обеспечивая развитие большого процента оплодотворенных яиц в жизнеспособное потомство.

СУЩНОСТЬ ИЗОБРЕТЕНИЯ

Раскрыт способ кормления животного композицией, которая содержит витамин Е и источник полифенолов. Животные могут включать моногастричных животных, таких как животные класса птицы или семейства свиньи. В некоторых вариантах осуществления скармливание витамина Е и источника полифенолов повышает продуктивность животных, которая определяется их репродуктивной способностью и полученным потомством. В других вариантах осуществления у животного обнаруживается повышение антиоксидантного статуса животного, а также его потомства. В некоторых вариантах осуществления витамин Е можно заменить источником полифенолов.

В одном аспекте изобретения раскрывается способ повышения продуктивности животного класса птицы, при этом способ включает:

скармливание животному класса птицы в составе его кормового рациона композиции, содержащей:

витамин Е; и

источник полифенолов;

сбор оплодотворенных яиц, снесенных животным класса птицы, после начала скармливания композиции животному класса птицы;

инкубацию оплодотворенных яиц до вылупления для обеспечения потомства; и

выращивание потомства;

при этом продуктивность повышается по сравнению с животным класса птицы, которому скармливали кормовой рацион, не содержащий композицию.

В другом аспекте изобретения раскрывается способ повышения продуктивности животного класса птицы, при этом способ включает:

скармливание животному класса птицы в составе его кормового рациона композиции, содержащей:

витамин Е; и

источник полифенолов;

при этом витамин Е присутствует в кормовом рационе на уровне включения от около 10 ppm (частей на миллион частей) до около 200 ppm (частей на миллион частей), и соотношение уровня включения витамина Е к уровню включения источника полифенолов в композиции составляет около 1:1 витамина Е к источнику полифенолов,

сбор оплодотворенных яиц, снесенных животным класса птицы, около 8 недель после начала скармливания композиции животному класса птицы;

инкубацию оплодотворенных яиц до вылупления для обеспечения потомства; и

выращивание потомства;

при этом продуктивность повышается по сравнению с животным класса птицы, которому скармливали кормовой рацион, не содержащий композицию.

В еще других аспектах изобретения раскрыт способ повышения продуктивности животного семейства свиньи, включающий:

скармливание животному семейства свиньи в составе его кормового рациона композиции, содержащей:

витамин Е; и

источник полифенолов, при этом продуктивность повышается по сравнению с животным, которому скармливали кормовой рацион, не содержащий композицию.

Другие аспекты изобретения включают способ повышения продуктивности животного семейства свиньи, включающий:

скармливание животному семейства свиньи в составе его кормового рациона композиции, содержащей:

витамин Е; и

источник полифенолов;

при этом витамин Е присутствует в кормовом рационе на уровне включения от около 1 ppm до около 300 ppm, и соотношение уровня включения витамина Е к уровню включения источника полифенолов в композиции составляет около 1:1 витамина Е к источнику полифенолов.

КРАТКОЕ ОПИСАНИЕ ЧЕРТЕЖЕЙ

На фиг.1 представлен график прироста массы тела по сравнению со стандартами продуктивности бройлеров породы Кобб 500 FF в примере 1.

На фиг.2 представлен график производства яиц по сравнению со стандартами продуктивности бройлеров породы Кобб 500 FF в примере 1.

На фиг.3 представлен график веса яиц по сравнению со стандартами продуктивности бройлеров породы Кобб 500 FF в примере 1.

На фиг.4 представлен график вылупляемости относительно общих результатов на основе обработки племенных бройлеров в примере 5.

На фиг.5 представлен график процентного соотношения пустых яиц, ранней, средней, поздней и общей эмбриональной смертности на основе обработки племенных бройлеров в примере 5.

На фиг.6 представлен график, демонстрирующий влияние обработки племенных бройлеров на соотношения корм к приросту для потомства в целом и корм к приросту, скорректированное с учетом окончательной массы тела, в примере 6.

На фиг.7 представлен график, демонстрирующий предоставленное количество корма во время предварительного экспериментального периода (49-56 недель) и экспериментального периода (56-64 недель) в примере 7.

На фиг.8 представлен график, демонстрирующий средний процент яйценоскости племенной птицы, получавшей различные рационы во время экспериментального периода (56-64 недель) в примере 7.

На фиг.9 представлен график, демонстрирующий ответную реакцию титров IgG к LPS по отношению к обработке и возрасту племенных бройлеров в примере 9.

На фиг.10 представлен график, демонстрирующий ответную реакцию HuSA-специфических титров по отношению к возрасту цыплят в примере 9.

На фиг.11 представлен график, демонстрирующий ответную реакцию титров LPS по отношению к обработке племенных бройлеров в примере 9.

ПОДРОБНОЕ ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ

Конкретные подробности нескольких вариантов осуществления изобретения описаны ниже со ссылкой на животное. Другие конкретные подробности нескольких вариантов осуществления изобретения описаны ниже со ссылкой на способ повышения продуктивности (например, продуктивности потомства или репродуктивной способности у животного (например, животного класса птицы или семейства свиньи). Например, в одном варианте осуществления раскрытый способ представляет собой способ, включающий скармливание животному в составе его кормового рациона композиции, содержащей витамин Е и источник полифенолов. В некоторых вариантах осуществления способ кормления животного его кормовым рационом включает витамин Е, присутствующий в кормовом рационе на уровне включения от около 10 ppm до около 100 ppm, и соотношение уровня включения витамина Е к уровню включения источника полифенолов в композиции, составляющее около 1:1 витамина Е к источнику полифенолов, сбор оплодотворенных яиц, снесенных животным класса птицы, около пяти недель после начала скармливания композиции животному класса птицы, инкубацию оплодотворенных яиц до вылупления для обеспечения потомства и выращивание потомства, при этом продуктивность потомства повышается по сравнению с потомством, полученным от животного класса птицы, которому скармливали кормовой рацион, не содержащий композицию.

Термин «животные», используемый в данном изобретении, включает моногастричных и жвачных животных. Используемый в данном изобретении термин «моногастричный» означает любой организм, имеющий простой однокамерный желудок. Такие моногастричные животные включают, но не ограничиваются ими, свиней, лошадей, коз, овец, животных класса птицы, промысловых морских животных (аквакультуру).

Используемые в данном изобретении моногастричные животные класса птицы включают птицу. Термин «птица», используемый в данном изобретении, означает домашних птиц, включая кур, индеек, гусей, уток, страусов, перепелов и фазанов, разводимых для производства мяса или яиц. Куры включают «несушек», выращиваемых для откладывания яиц, и «бройлеров» для производства мяса. Куры также включают «племенных птиц», то есть птиц, которые достигли возраста половой зрелости и могут откладывать яйца. В некоторых вариантах осуществления животное класса птицы выбирают из группы, состоящей из курицы, индейки, утки и гуся. В некоторых вариантах осуществления животное класса птицы является курицей.

Куры, подходящие для применения в вариантах осуществления настоящего изобретения, могут принадлежать к одной из многих возможных пород кур, включающих, например, Росс, Кобб, Иза Браун, Хаббард, Шейвер, Арбор Айрекс, Индиан Ривер, Петерсон и Декалб Белый. В некоторых вариантах осуществления курица может быть курицей породы Росс.

Моногастричные животные семейства свиньи включают, например, свиней на откорме и племенных свиней, включающих поросят, свиноматок, подсвинков, боровов и хряков. Используемый в данном изобретении термин «жвачные» означает любое млекопитающее, которое имеет многокамерный желудок, и ассоциирующееся с перевариванием пищи отрыгиванием и повторным пережевыванием болюса или жвачки. Такие жвачные млекопитающие включают, но не ограничиваются ими, крупный рогатый скот, как например, буйволов, бизонов, и весь скот, включая телят, бычков, телок, коров и быков.

Несмотря на то, что описание приводится преимущественно со ссылкой на животных класса птицы и семейства свиньи, оно не ограничено как таковое, и должно быть понятно, что изобретение применимо к другим моногастричным и жвачным животным.

Антиоксиданты, при включении в рацион животных, как известно, защищают клетки от повреждений, вызванных свободными радикалами и перекисями. Существуют различные типы антиоксидантов, подходящих для кормления животного (например, класса птицы и семейства свиньи), включая натуральные пищевые антиоксиданты. К числу натуральных пищевых антиоксидантов относятся, например, витамины (например, Е, С), минеральные вещества (например, Se, Zn), каротиноиды и полифенолы.

Полифенолы, как известно, способствуют регенерации витамина Е в дополнение к их функции захвата свободных радикалов. Полифенолы, используемые в вариантах осуществления настоящего изобретения, имеются на рынке и могут быть получены из различных источников, включающих, например, фрукты, овощи, бобовые растения, орехи, семена, экстракты чая, травы, специи и древесную кору. Фрукты, из которых можно экстрагировать полифенолы, включают, например, яблоки (красные или зеленые), абрикосы, смородину (черную или красную), ежевику, чернику, вишню (сладкую или кислую), черноплодную рябину, клюкву, финики, бузину, крыжовник, виноград (красный или фиолетовый) киви, лимоны, бруснику, лайм, манго, ягоды марион, нектарины, оливки, апельсины (например, Навель, танжело, мандарины, королек), персики, груши, сливы, гранаты, айву, малину, ревень, клубнику и томаты. Овощи, из которых можно экстрагировать полифенолы, включают, например, артишоки, брокколи, сельдерей, кукурузу, баклажаны, фенхель, чеснок, листовую зелень (например, капусту листовую и сурепицу), кольраби, лук-порей, любисток, лук (красный и желтый), пастернак, перец, шпинат, красную капусту, брюкву, зеленый лук, лук-шалот, сладкий картофель и водяной кресс. Бобовые растения, орехи, семена, из которых можно экстрагировать полифенолы, включают, например, семена любых фруктов, перечисленных выше (например, виноградные косточки), миндаль, кешью, нут, фасоль (например, черную фасоль, красную фасоль, фасоль пинто, коровий горох), «английский» горох, кормовые бобы, семена льна, зеленый горошек, лесные орехи, чечевицу, орехи пекан, арахис, фисташки, семена тыквы, фасоль обыкновенную, семена подсолнечника и грецкие орехи. Чаи, из которого можно экстрагировать полифенолы, включают, например, зеленый чай, черный чай, чай улун, чай Эрл Грей, цейлонский чай и чай Дарджилинг. Травы и специи, из которых можно экстрагировать полифенолы, включают, например, базилик, шнитт-лук, каперсы (красные и зеленые), корицу, карри, укроп пахучий, хрен, орегано, петрушку, розмарин, шалфей, эстрагон и тимьян. В некоторых вариантах осуществления источник полифенолов включает, по меньшей мере, одно из следующего: экстракт лука, экстракт виноградных косточек и экстракт розмарина. Древесная кора, из которой можно экстрагировать полифенолы, включает, например, кору арджуны, кору осины, березовую кору, кору хвойных деревьев (например, кедра, кипариса, пихты, лиственницы, сосны, ели, тиса), кору эвкалипта и кору клена.

В некоторых вариантах осуществления источник полифенолов может включать экстракт лука, экстракт виноградных косточек и экстракт розмарина.

Источник полифенолов, подходящий для применения в вариантах осуществления настоящего изобретения, имеется на рынке под торговым названием PROVIOX 50, предоставляемый Cargill, Incorporated, Wayzata, MN, США. Состав PROVIOX 50 включает смесь полифенолов экстрактов виноградных косточек и кожуры, экстрактов лука и экстрактов розмарина. PROVIOX 50 представляет собой стандартизованный продукт по его общему содержанию полифенолов. PROVIOX 50 содержит источник соединений с антиоксидантными свойствами и может заменить или дополнить витамин Е 50, что может сэкономить расходы и обеспечить животным антиоксидантный статус и продуктивность. Коэффициент замены зависит от уровня витамина Е в рационе. В некоторых вариантах осуществления уровни витамина Е выше требований Национального научно-исследовательского совета (NRC) (смотри Таблицы A и B для свиней и птицы) могут быть замещены или заменены эквивалентом витамина Е, таким как полифенол. В некоторых вариантах осуществления полифенолом является PROVIOX 50.

Один аспект настоящего изобретения относится к скармливанию животному в составе его кормового рациона композиции, содержащей витамин Е и источник полифенолов, такой как PROVIOX 50.

В некоторых вариантах осуществления для кормления животного класса птицы витамин Е присутствует в кормовом рационе на уровне включения от около 10 ppm до около 200 ppm, от около 20 ppm до около 100 ppm, от около 30 ppm до около 90 ppm или от около 35 ppm до около 85 ppm.

В некоторых вариантах осуществления для кормления животного семейства свиньи витамин Е присутствует в кормовом рационе на уровне включения от около 1 ppm до около 300 ppm, от около 20 ppm до около 250 ppm, от около 30 ppm до около 200 ppm или от около 35 ppm до около 150 ppm.

В некоторых вариантах осуществления соотношение уровня включения витамина Е к уровню включения источника полифенолов в композиции составляет около 1:1 витамина Е к источнику полифенолов. Витамин Е в рационе животных обычно, по меньшей мере, находится на уровне (равен) минимального требования Национального научно-исследовательского совета (NRC) (смотри ниже таблицы А и В для свиней и птицы).

В некоторых вариантах осуществления уровни витамина Е выше минимальных уровней NRC могут быть заменены, замещены эквивалентом витамина Е, таким как полифенол. В некоторых вариантах осуществления полифенолом является PROVIOX 50. Несмотря на то, что композиция рассматривается в привязке к соотношению 1:1 витамина Е к эквиваленту витамина Е, следует понимать, что заявка предполагает различные другие соотношения витамина Е к эквиваленту витамина Е, такому как полифенол. В некоторых вариантах соотношение витамина Е к источнику полифенолов может находиться в диапазоне от около 1:2 до около 1:5, например 1:2, 1:3, 1:4 или 1:5.

Таблица А

Таблица В

Уровень включения источника полифенолов в полнорационный комбикорм изменяется от 1 ppm до 300 ppm (от 10 г до 300 г источника полифенолов на тонну полнорационного комбикорма). Например, от 10 ppm до 100 ppm, также, например, от 20 ppm до 95 ppm, также, например, от 30 ppm до 90 ppm, также, например, от 35 ppm до 85 ppm.

В некоторых вариантах осуществления животному класса птицы скармливают композицию, содержащую витамин Е и источник полифенолов, для повышения продуктивности птицы. Продуктивность птицы включает продуктивность племенной птицы, продуктивность потомства и антиоксидантный статус.

В некоторых вариантах осуществления животному класса птицы скармливают композицию, которая содержит витамин Е и источник полифенолов в течение, по меньшей мере, около 5 недель, по меньшей мере, около 6 недель, по меньшей мере, около 7 недель, по меньшей мере, около 8 недель до сбора оплодотворенных яиц для инкубации. В одном варианте осуществления оплодотворенные яйца собирают около 6-10 недель после начала скармливания композиции животному класса птицы. В других вариантах осуществления оплодотворенные яйца собирают около 8 недель после начала скармливания композиции.

Способы приготовления корма для животных класса птицы известны в данной области и описаны, например, в кормлении птицы: The Classic Guide to Poultry Nutrition for Chickens, Turkeys, Ducks, Geese, Gamebirds, and Pigeons, G.F. Heauser, Norton Creek Press, 2003 и Commercial Poultry Nutrition, 3rd Edition, Leeson et al., University Books, 2005.

Кормовые рационы для животных класса птицы могут содержать разнообразные компоненты, такие как, например, кукуруза, пшеница, соевая мука, жиры и масла (например, соевое масло), известняк, монокальцийфосфат, бикарбонат натрия, хлорид натрия, L-лизин HCl, DL-метионин, L-треонин и стартовый премикс или ростовой премикс, включая, например, витамин А (ретинилацетат), витамин D3 (холекальциферол), витамин Е (DL-α-токоферол), витамин К3 (менадион), витамин В1 (тиамин), витамин В2 (рибофлавин), витамин B6 (пиридоксин HCl), витамин B12 (цианокобаламин), никотиновую кислоту, D-пантотеновую кислоту, холина хлорид, фолиевую кислоту, биотин, KI, FeSO₄⋅H₂O; CuSO₄×5H₂O, MnO, ZnSO₄×H₂O и Na₂SeO₃.

В некоторых вариантах осуществления животному класса птицы можно скармливать композицию, содержащую витамин Е и источник полифенолов, начиная с вылупления, начиная с возраста 1 неделя от вылупления, начиная с возраста 2 недели, начиная с возраста 3 недели, начиная с возраста 4 недели, начиная с возраста 5 недель, начиная с возраста 6 недель, начиная с возраста 7 недель, начиная с возраста 8 недель, начиная с возраста 9 недель, начиная с возраста 10 недель, начиная с возраста 11 недель, начиная с возраста 12 недель, начиная с возраста 13 недель, начиная с возраста 14 недель, начиная с возраста 15 недель, начиная с возраста 16 недель, начиная с возраста 17 недель, начиная с возраста 18 недель, начиная с возраста 19 недель, начиная с возраста 20 недель, начиная с возраста 21 неделя, начиная с возраста 22 недели, начиная с возраста 23 недели, начиная с возраста 24 недели, начиная с возраста 25 недель, начиная с возраста 26 недель, начиная с возраста 27 недель, начиная с возраста 28 недель, начиная с возраста 29 недель или начиная с возраста 30 недель от вылупления. В некоторых вариантах осуществления животному класса птицы можно скармливать композицию, содержащую витамин Е и источник полифенолов, на протяжении всего жизненного цикла.

Потомство из оплодотворенных яиц, снесенных животным класса птицы, которому скармливали композицию, содержащую витамин Е и источник полифенолов, может демонстрировать повышенную продуктивность по сравнению с потомством от животного класса птицы, которому скармливали кормовой рацион, не содержащий композицию, что можно определить согласно способам, известным среднему специалисту в соответствующих областях.

В некоторых вариантах осуществления повышенная продуктивность потомства является, по меньшей мере, одним из следующего: повышенным весом потомства при выводе, повышенной окончательной массой тела потомства, повышенным среднесуточным приростом потомства, повышенным коэффициентом конверсии корма потомства, повышенным потреблением корма потомством и антиоксидантным статусом. Антиоксидантный статус можно определить любыми известными методами, включая определение активностей супероксиддисмутазы или глутатионпероксидазы и уровней витамина А и витамина Е.

В некоторых вариантах осуществления повышенная продуктивность потомства у птицы является, по меньшей мере, на 1% выше, по меньшей мере, на 1,5% выше, по меньшей мере, на 2% выше, по меньшей мере, на 2,5% выше, по меньшей мере, на 3% выше, по меньшей мере, на 3,5% выше, по меньшей мере, на 4% выше, по меньшей мере, на 4,5% выше, по меньшей мере, на 5% выше, по меньшей мере, на 5,5% выше, по меньшей мере, на 6% выше, по меньшей мере, на 6,5% выше, по меньшей мере, на 7% выше, по меньшей мере, на 7,5% выше, по меньшей мере, на 8% выше, по меньшей мере, на 8,5% выше, по меньшей мере, на 9% выше, по меньшей мере, на 9,5% выше или, по меньшей мере, на 10% выше по сравнению с продуктивностью потомства от животного класса птицы, которому скармливали кормовой рацион, не содержащий композицию. В других вариантах осуществления продуктивность потомства у птицы, которой скармливали раскрытую композицию, содержащую источник полифенолов, такая же, как у животного класса птицы, которому скармливали витамин Е.

В некоторых вариантах осуществления продуктивность племенной птицы повышена по сравнению с племенной птицей, которой скармливали рацион без витамина Е. В некоторых вариантах осуществления скармливание композиции, содержащей витамин Е и источник полифенолов, может приводить к аналогичной или более высокой продуктивности племенной птицы по сравнению с племенной птицы, которой скармливали только витамин Е. Продуктивность племенной птицы включает, например, вылупляемость оплодотворенных яиц и повреждение (разлом) яичной скорлупы. В некоторых вариантах осуществления вылупляемость улучшилась. В других вариантах осуществления повреждение яичной скорлупы было снижено. В других вариантах осуществления антиоксидантный статус был повышен.

Аналогичный способ может относиться к кормлению животного семейства свиньи, как описано далее в примерах. В некоторых вариантах осуществления животному семейства свиньи скармливают композицию, содержащую витамин Е и источник полифенолов, для повышения продуктивности свиней. Продуктивность свиней включает репродуктивную способность, продуктивность помета и антиоксидантный статус.

Репродуктивная способность включает, например, процент опороса, фактический размер приплода, спаривание, опорос и отъем и другие показатели, которые определены в таблице 44. Продуктивность помета включает, например, количество животных семейства свиньи, родившихся живыми, слабыми или родившихся мумифицированными, вес помета (например, при отъеме или после лактации) и другие показатели, которые определены в таблице 45. Антиоксидантный статус включает определение активности супероксиддисмутазы, глутатионпероксидазы и определение содержания витаминов А и Е.

Скармливание композиции, содержащей витамин Е и источник полифенолов, может приводить к повышению продуктивности свиней относительно свиней, которым скармливали рацион без витамина Е. В некоторых вариантах осуществления скармливание композиции, содержащей витамин Е и источник полифенолов, может приводить к аналогичной или более высокой продуктивности свиней по сравнению со свиньями, которым скармливали только витамин Е.

Скармливание композиции можно осуществлять ежедневно в течение начального периода супоросности вплоть до лактации и опороса. В некоторых вариантах осуществления скармливание можно начать с первого дня случки и даже в период за 120 дней до случки (предслучный период). Корм, скармливаемый во время предслучного периода и во время случки, хорошо известен в данной области. Концентрация композиции, содержащей витамин Е и полифенол, может быть по существу такой же во время предслучного периода, как та, которую скармливают во время периода супоросности.

Базовый рацион может быть любым типичным рационом для свиней, известным в данной области, включая рационы, специально разработанные для супоросных или лактирующих свиней. Например, рацион будет включать разнообразные компоненты, описанные в таблице 42 заявки. Подробное руководство по составлению рационов для кормления свиней можно найти в «Nutrient Requirements of Swine», Nutrient Requirements of Domestic Animals, Number 3, 9^th rev. ed. (National Academy of Science, Washington, D.C.: 1988).

Используемые график кормления и нормы кормления могут быть любыми стандартными графиком и нормой, используемыми в данной области. Обычно супоросным свиньям скармливают от около 4 до около 6 фунтов рациона в день и от около 4 до около 5 фунтов в день. Лактирующим свиньям обычно скармливают от около 9 до около 15 фунтов рациона в день и от около 13 до около 14 фунтов в день. Обычно кормление осуществляют от 1 до 2 раз в день для супоросных свиней и от 1 до 2 и максимально до 4 раз в день для лактирующих свиней.

В некоторых вариантах осуществления для кормления животного семейства свиньи витамин Е присутствует в кормовом рационе на уровне включения от около 1 ppm до около 300 ppm, от около 20 ppm до около 250 ppm, от около 30 ppm до около 200 ppm или от около 35 ppm до около 150 ppm.

ПРИМЕРЫ

Аспекты конкретных способов в соответствии с аспектами изобретения проиллюстрированы в следующих примерах. Примеры 1-9 предназначены для кормления животного класса птицы, а пример 10 предназначен для кормления животного семейства свиньи.

ПРИМЕР 1. ЧАСТИЧНАЯ ЗАМЕНА ВИТАМИНА Е НА PROVIOX 50 В РАЦИОНАХ ПЛЕМЕННЫХ БРОЙЛЕРОВ

Два различных рациона бройлеров (таблица 1) испытывали при дизайне рандомизированных блоков. Племенная птица получала стандартный контрольный рацион или рацион, в котором 50% витамина Е заменили на PROVIOX 50. Два рациона распределили случайным образом на шесть клеток, получив три повторности на обработку с 28, 29 или 30 курочками и тремя или четырьмя петушками на повторность.

Таблица 1

Рационы племенных бройлеров

Экспериментальный период длился четыре недели; племенная птица получала стартовый рацион несушек в течение всего периода согласно экспериментальному дизайну. Корм и воду ограничивали. Количество корма зависело от прироста массы тела. График кормления для примера 1 приведен в таблице 2. Воду предоставляли в течение двух часов в день, зобы проверяли регулярно для гарантии обеспечения достаточного количества воды.

Таблица 2

График кормления

В общей сложности было предоставлено 24 петушка и 173 курочки племенных цыплят породы Кобб 500 FF в возрасте 20 недель. Петушков и курочек случайным образом распределили в шесть напольных клеток (четыре петушка на клетку, 29 курочек на клетки 1-3, 30 курочек на клетку 4 и 28 курочек на клетки 5 и 6). Во время предопытного периода вся племенная птица получала контрольный рацион.

На протяжении всего опыта племенная птица была размещена в напольных клетках для племенных бройлеров (2,60×2,40 м) на подстилке (лен). Каждая клетка была оборудована двумя колокольными поилками, регулируемыми по высоте. Корм для курочек подавали посредством двух бункерных кормушек на приподнятый сетчатый пол. Корм для петушков подавали посредством желобковой кормушки на другую сторону клетки.

Продолжительность светового дня устанавливали на уровне 14 часов в сутки до достижения пика яйцекладки (70%, 15 день). После достижения пика яйцекладки продолжительность светового дня устанавливали на 15 часов в сутки. Температуру и вентиляцию контролировали с помощью компьютера. Температуру устанавливали на уровне 20°С в течение всего экспериментального периода.

Рационы были произведены Research Diet Services, Wijk bij Duurstede, Нидерланды. Все рационы были произведены отдельно с использованием одной партии базового рациона для рационов курочек и одной партии базового рациона для рационов петушков. Рационы были произведены в виде комбикорма.

До начала приготовления композиции рациона партии соевого шрота и кукурузы и пшеницы грубого помола резервировали и анализировали методом «мокрой химии» на содержание сырого протеина, кальция и фосфора. Кроме того, соевый шрот анализировали на содержание калия. Спектрометрию в ближней инфракрасной области спектра («БИКС») с использованием спектрометра Bruker MPA по ISO 12099, производимого Bruker Optik GmbH, Ettlingen, Германия, использовали для определения содержания сырой золы, сырого жира, сырой клетчатки, влаги, и для перепроверки сырого протеина. Составление рационов было основано на проанализированном содержании питательных веществ зарезервированных компонентов.

Базовый рацион (кукуруза - соевый шрот - пшеница и пшеничные отруби) составили на основе рекомендаций по содержанию питательных веществ Provimi B.V. для племенных бройлеров. Премикс для племенных бройлеров использовали без добавления витамина Е и специального антиоксидантного продукта. Получали различные рационы для петушков и курочек, при этом используя один и тот же экспериментальный дизайн. Это было сделано, чтобы иметь возможность кормить петушков в соответствии с их потребностями в питательных веществах (более низкими потребностями в сыром протеине, энергии и кальции, и различных премиксах) без отклонения от экспериментального дизайна. Состав экспериментальных рационов приведен в таблице 3. Результаты анализа экспериментальных рационов представлены в таблице 4.

Таблица 3

Компонентный и питательный состав экспериментальных рационов

¹Приводится на кг рациона: рибофлавин, 9,0 мг; ниацинамид, 40 мг; D-пантотеновая кислота, 12 мг; холина хлорид, 600 мг; DL-α-токоферол, - МЕ; менадион, 2,5 мг; ретинилацетат, 12500 МЕ; холекальциферол, 2500 МЕ; биотин, 150 мкг; фолиевая кислота, 1,5 мг; тиамин, 2,0 мг; пиридоксин HCl, 4,5 мг; цианокобаламин, 30 мкг; FeSO₄×H₂O, 147 мг; MnO₂, 135 мг; CuSO₄×5H₂O, 40 мг; ZnSO₄×H₂O, 275 мг; Se (орг.), 0,88 мг; KI, 2,6 мг; антиоксидант (Oxytrap PXN), - мг.

²Приводится на кг рациона: рибофлавин, 7,5 мг; ниацинамид, 30 мг; D-пантотеновая кислота, 9 мг; холина хлорид, 500 мг; DL-α-токоферол, - МЕ; менадион, 3,5 мг; ретинилацетат, 10000 МЕ; холекальциферол, 2000 МЕ; биотин, 100 мкг; фолиевая кислота, 1,0 мг; тиамин, 2,0 мг; пиридоксин HCl, 3,0 мг; цианокобаламин, 25 мкг; FeSO₄×H₂O, 147 мг; MnO₂, 106 мг; CuSO₄×5H₂O, 40 мг; ZnSO₄×H₂O, 206 мг; Se (орг.), 0,88 мг; KI, 1,9 мг; антиоксидант (Oxytrap PXN), - мг.

Таблица 4

Проанализированный питательный состав экспериментальных рационов

Индивидуальный вес птиц регистрировали еженедельно с момента начала эксперимента. Предоставленное количество корма регистрировали ежедневно. Данные по производству яиц и качеству яиц регистрировали ежедневно, % яйценоскости рассчитывали как количество яиц, снесенных на клетку, деленное на количество птицедней экспериментального периода. Валовое производство яиц на клетку в неделю рассчитывали как % яйценоскости (включая яйца второй категории) умноженный на средний вес яйца в клетке. Средний вес яйца определяли на клетку один раз в неделю. Яйца второй категории разделяли на грязные яйца, разбитые яйца, яйца без скорлупы, двухжелтковые яйца, напольные яйца и остальные яйца второй категории. Смертность контролировали каждый день; мертвых животных не заменяли в течение экспериментального периода.

Для сравнения различных видов обработки все показатели подвергали процедуре смешанной модели с применением SAS версии 9.2, 2008 (SAS Institute Inc., Cary, NC, США) в соответствии со следующей статистической моделью:

Y_ij=μ+α_i+ε_ij

где:

Y_ij=конкретный признак на экспериментальную единицу (клетку);

μ=общее среднее значение для конкретного признака;

α_i=фиксированный эффект обработки (i=1 или 2);

ε_ij=вектор ошибки.

Различия между средними значениями считались статистически достоверными на основе вероятности Р<0,05 (t-критерий Стьюдента для расхождения средних значений), если не указано другое значение вероятности.

Питательный состав рационов обоснованно соответствовал ожидаемым значениям (таблица 4) за исключением уровня кальция в контрольном рационе петушков и уровня фосфора в рационе петушков PROVIOX 50 (на основе параллельного анализа). Однако так как одну партию рациона использовали для производства обоих рационов, и использовали те же зарезервированные и проанализированные компоненты, как и для рационов курочек, то предполагается, что эти данные относятся к ошибкам анализа или отбора проб, так как рационы скармливали в виде комбикорма.

Наблюдаемое состояние здоровья птиц было хорошим на протяжении всего эксперимента. Смертность, включая выбраковку, составила 1,5% (таблица 5), что соответствует фактическим уровням (1,6% в возрасте от 26 до 30 недель). Техническая показатели птиц соответствовали стандартам племенной птицы породы Кобб 500 FF (фиг.1-3 и таблица 6).

Таблица 5

Смертность и выбраковка, рассчитанные как процент животных в начале испытания (всего 195)

Таблица 6

Технические результаты племенной птицы, которой скармливали контрольный рацион или рацион PROVIOX 50, в котором половину уровня витамина Е заменили на PROVIOX 50 (в возрасте от 26 до 30 недель)

Как показано на фиг. 1-3 и в таблице 6, никаких статистически достоверных различий не было обнаружено между двумя группами обработки по показателю яйценоскости племенных бройлеров. Это может быть связано с числом повторностей на обработку. Некоторые изменения предполагались, поскольку племенная птица находилась на начальной стадии производства яиц.

Никаких статистически достоверных различий не было обнаружено между двумя обработками, указывая, что на продуктивность племенной птицы не влияла замена 50% уровня витамина Е на PROVIOX 50.

ПРИМЕР 2. ПОЛУЧЕНИЕ ЦЫПЛЯТ ИЗ ЯИЦ ПРИМЕРА 1

В течение девяти дней яйца собирали от племенного стада бройлеров из примера 1. Яйца хранили с учетом клетки племенной птицы и дня хранения. Яйца распределяли на двенадцать лотков и девять блоков, причем каждый блок представлял собой день хранения. На E17 все яйца проверяли просвечиванием, а на E18 яйца перемещали из выводных камер инкубатора в выводные корзины.

В общей сложности 540 яиц (все яйца, снесенные в течение девяти дней), полученных от племенных бройлеров в возрасте 28-29 недель из Примера 1, собирали и помещали в инкубатор при 18°C (64,4°F) и относительной влажности 75%. В начале периода инкубации яйца взвешивали и распределяли по блокам, каждый блок представлял собой день хранения. Каждый блок состоит из двенадцати экспериментальных единиц, причем каждая экспериментальная единица означала группу из десяти яиц. Включали только неповрежденные яйца; треснутые, грязные или яйца с деформированной скорлупой исключали из эксперимента.

Яйца помещали в инкубатор NatureForm NMC 2340 с автоматическим регулированием температуры и относительной влажности. С E0 по E18 яйца помещали в инкубационные тележки, которые состоят из двух полок, вмещающих тринадцать лотков каждая. Каждый лоток имеет три прокладки для тридцати яиц. Во время этого периода начальную температуру в инкубаторе устанавливали на 37,5°С, а относительную влажность на 54%. Температуру устанавливали на основе температурного профиля, начиная при 37,5°С на E0 и постепенно снижая с E12 по E18 с 37,5°С до 36,7°С.

После периода инкубации (E0-E18) яйца перемещали в корзины выводных шкафов с использованием структуры блоков в инкубаторе. Яйца помещали в секции выводного ящика на повторность, и потом лоток по порядку в блок. Каждая выводная тележка имеет двенадцать корзин, вмещающих 180 яиц каждая. В этот период температуру в инкубаторе устанавливали на 36,7°С, а относительную влажность на 70%.

Вес яиц регистрировали для каждой экспериментальной единицы на E0. На стадии вылупливания (E21) регистрировали количество мертвых цыплят, погибших эмбрионов и яиц с наклевом (внешним и внутренним). Оставшиеся невылупившиеся яйца вскрывали для определения возраста и причины смерти. Количество вылупившихся цыплят регистрировали на каждую повторность, а также средний вес цыпленка. Пол устанавливали исследованием клоаки цыпленка, проведенным профессиональным оператором, определяющим пол цыплят. Вылупляемость рассчитывали как процент от общего количества и оплодотворенных яиц (яиц, которые содержали живые эмбрионы после E17). В общей сложности 102 цыпленка-петушка на обработку отбирали случайным образом для примера 3 на основе с учетом клетки племенных бройлеров. Отбирали только цыплят со средней массой тела, полностью сухих, демонстрирующих активное движение и с закрытым пупочным кольцом. Два цыпленка-петушка из каждой экспериментальной единицы (в общей сложности 108 на обработку) отбирали для вскрытия. Отобранных цыплят индивидуально взвешивали и убивали смещением шейных позвонков для определения веса остаточного желточного мешка, массы тела без желтка («YFBM»), длины цыпленка и длины лапки для обеих лапок. Относительную асимметрию рассчитывали по следующей формуле:

RA=(|L-R|/[(L+R)/2])×100

где:

L=длина левой лапки

R=длина правой лапки.

Для сравнения различных видов обработки все показатели подвергали процедуре смешанной модели с применением SAS версии 9.2, 2008 (SAS Institute Inc., Cary, NC, США) в соответствии со следующей статистической моделью:

Y_ijkl=μ+α_i+b_j+c_k+ac_ik+ε_ijkl

где:

Y_ijkl=конкретный признак;

μ=общее среднее значение для конкретного признака;

α_i=фиксированный эффект обработки племенных бройлеров (i=1 или 2);

b_j=случайный эффект блок/день хранения (j=1-9);

c_k=случайный эффект всей диаграммы блока (k=1, 2 или 3);

ac_ik=случайный эффект взаимодействия всей диаграммы блока и обработки;

ε_ijkl=вектор ошибки.

Фактор взаимодействия всей диаграммы блока с обработкой включали в модель для корректировки количества экспериментальных единиц, используемых для обработки племенных бройлеров. С учетом дизайна опыта эффект дня хранения полностью соединяли с эффектом блока (места нахождения в инкубаторе). Показатели плодовитости, общей вылупляемости и вылупляемость оплодотворенных яиц рассматривались как биномиальные данные. Различия между средними значениями считались статистически достоверными на основе вероятности Р<0,05 (t-критерий Стьюдента для расхождения средних значений), если не указано другое значение вероятности.

Средний вес яиц в начале опыта составил 57,9 грамм на яйцо. Общая плодовитость (94%) соответствовала норме племенной птицы породы Кобб, а вылупляемость (91%) была выше средней в соответствии с нормой племенной птицы (соответственно 95% и 85% для племенной птицы в возрасте 28-29 недель). Более высокие результаты вылупляемости по сравнению с нормой могут возникать в результате использованных небольших инкубаторов по сравнению с инкубаторами, используемыми на практике, приводя к оптимизированному процессу инкубации и, следовательно, меньшей эмбриональной смертности.

Обработки бройлеров статистически достоверно не влияли на плодовитость и вылупляемость (таблица 7). Однако количественно обработка яиц, снесенных племенными бройлерами, проводимая скармливанием PROVIOX 50, позволила на 4,6% повысить вылупляемость в целом, что преимущественно связано с увеличением плодовитости на 3,6%.

Таблица 7

Влияние обработки племенных бройлеров на вылупляемость, плодовитость, вес цыплят и относительный вес цыплят

Обработки племенных бройлеров статистически достоверно не оказывали влияния на любое из следующего: продуктивность кур и показатели качества, которые оценивали (таблица 8), свидетельствуя, что 50% замена уровня витамина Е в рационе племенных бройлеров на PROVIOX 50 не влияла на продуктивность вылупившихся цыплят.

Таблица 8

Влияние обработки племенных бройлеров на вес цыпленка, вес желточного мешка, относительный вес желточного мешка, массу тела без желтка, длину цыпленка и относительную асимметрию лапок («RA») вскрытых цыплят

¹выраженный в процентах от среднего веса яиц

²выраженный в процентах от веса цыплят

³масса тела без желтка

Результаты показывают, что 50% замена витамина Е в рационе племенных бройлеров на PROVIOX 50 статистически достоверно не оказывает влияния на продуктивность вылупившихся цыплят (например, плодовитость, вылупляемость и характеристики вылупившихся цыплят).

ПРИМЕР 3. ВЫРАЩИВАНИЕ ЦЫПЛЯТ ИЗ ПРИМЕРА 2

В данном примере вылупившихся цыплят выращивали до возраста убоя и оценивали продуктивность. Целью текущего эксперимента было оценить влияние на продуктивность потомства рациона племенных бройлеров с витамином Е по сравнению с 50% заменой витамина Е на PROVIOX 50.

Испытывали два различных вида обработки племенных бройлеров, как представлено в примере 1. В данном примере вылупившихся цыплят из примера 2 выращивали из яиц, полученных в примере 1, при этом племенная птица получала контрольный рацион или рацион, в котором уровень витамина Е на 50% заменили PROVIOX 50.

Экспериментальный период разделяли на стартовую фазу (0-14 дней) и ростовую фазу (14-35 дней). Корм и воду предоставляли вволю.

В общей сложности 204 быстро оперяющихся суточных цыпленка-петушка породы Кобб 500, полученных от племенных бройлеров в возрасте 28-29 недель (пример 1), отбирали из общего числа вылупившихся цыплят-петушков из примера 2. При отборе цыплят выбирали случайным образом из различных экспериментальных единиц в инкубаторе, обеспечивая сохранение без повреждений экспериментальной единицы птичника для племенных бройлеров, размещая цыплят из одной экспериментальной единицы птичника для племенных бройлеров в две клетки птичника для выращивания. В клетке содержали семнадцать цыплят. Для распределения семнадцати цыплят на клетку поддоны с суточными цыплятами из определенной экспериментальной единицы примера 2 располагали в линию; из каждого поддона цыплят отбирали случайным образом и помещали в определенную клетку. Эта процедура повторялась для всех клеток данного примера.

После размещения цыплят в клетки регистрировали индивидуальный вес всех цыплят в клетке для определения начального веса цыплят. Между различными видами обработки имелось заметное различие в начальном веса, соответственно 40,9 г (±1,6) и 39,9 г (±0,9) для обработки 1 (только витамин Е) и 2 (50% замена витамина Е на PROVIOX 50).

На протяжении всего эксперимента цыплят содержали в отдельных клетках для выращивания бройлеров (100×110 см) на подстилке (древесная стружка). Каждая клетка была оборудована двумя ниппельными поилками с регулируемой высотой. В течение первых четырнадцати дней кормушка находилась внутри клетки, а начиная с четырнадцатого дня, корм подавали посредством желобковой кормушки в передней части клетки.

Продолжительность светового дня устанавливали на 23 часа в сутки в течение первых трех дней, на 20 часов в сутки с четвертого дня по седьмой день и на 18 часов в сутки в течение оставшейся части эксперимента. Температуру, влажность и вентиляцию контролировали с помощью компьютера. Температуру постепенно снижали на 2,5°С в неделю, с 35°C в день поступления до конечной температуры 20,5°C в конце эксперимента (35 день). Относительная влажность воздуха в экспериментальном птичнике устанавливали на уровне 50 процентов. Птиц вакцинировали методом распыления против болезни Ньюкасла (вакцина Poulvac NDW, производимая Intervet, Boxmeer, Нидерланды) в возрасте 14 дней.

До начала приготовления рациона партии пшеницы, кукурузы и соевого шрота резервировали и анализировали. Рационы были произведены Research Diet Services, Wijk bij Duurstede, Нидерланды. Стартовые и ростовые рационы были произведены с использованием одной партии базового рациона (для каждого периода). Стартовые рационы гранулировали в гранулы размером 2,5 мм, а ростовые рационы в гранулы размером 3 мм с добавлением пара (около 80°C). Составление рационов было основано на проанализированном содержании питательных веществ компонентов. Рационы составляли для удовлетворения потребности бройлеров в питательных веществах (CVB, 2006). Стартовые и ростовые рационы содержали 2750 и 2850 ккал КОЭ⋅кг^-1 и 10,20 и 9,70 г×кг^-1 кажущегося фекально усвояемого (AFD) лизина, соответственно. Состав экспериментальных рационов приведен в таблице 9, результаты анализа представлены в таблице 10.

Таблица 9

Компонентный и питательный состав стартового и ростового рациона

¹Приводится на кг рациона: витамин А (ретинилацетат), 12000 МЕ; витамин D3 (холекальциферол), 5000 МЕ; витамин Е (DL-α-токоферол), - мг; витамин К3 (менадион), 2,3 мг; витамин В1 (тиамин), 1,0 мг; витамин В2 (рибофлавин), 4,5 мг; витамин B6 (пиридоксин HCl), 2,7 мг; витамин B12 (цианокобаламин), 20 мкг; ниацин, 40 мг; D-пантотеновая кислота, 9 мг; холина хлорид, 500 мг; фолиевая кислота, 0,5 мг; биотин, 100 мкг; FeSO₄×H₂O, 150 мг; CuSO₄×5H₂O, 40 мг; MnO, 100 мг; ZnSO₄×H₂O, 145 мг; KI, 2,0 мг; Na₂SeO₃, 0,56 мг; антиоксидант (Oxytrap PXN), - мг.

²Приводится на кг рациона: витамин А (ретинилацетат), 10000 МЕ; витамин D3 (холекальциферол), 2000 МЕ; витамин Е (DL-α-токоферол), - мг; витамин К3 (менадион), 2,3 мг; витамин В1 (тиамин), 0,8 мг; витамин В2 (рибофлавин), 4,5 мг; витамин B6 (пиридоксин HCl), 1,9 мг; витамин B12 (цианокобаламин), 20 мкг; ниацина, 30 мг; D-пантотеновая кислота, 8 мг; холина хлорид, 400 мг; фолиевая кислота, 0,5 мг; биотин, 50 мкг; FeSO₄×H₂O, 150 мг; CuSO₄×5H₂O, 40 мг; MnO, 100 мг; ZnSO₄×H₂O, 145 мг; KI, 1,9 мг; Na₂SeO₃, 0,50 мг; антиоксидант (Oxytrap PXN), - мг.

³Согласно расчетам CVB (2006)

⁴AFD=кажущаяся фекальная усвояемость, расчеты CVB (2006).

⁵TFD=истинная фекальная усвояемость.

Таблица 10

Проанализированный питательный состав экспериментальных рационов

Индивидуальный вес птиц регистрировали в начале эксперимента (0 день) и в возрасте 3, 14, 28 и 35 дней. Кроме того, потребление корма для каждой клетки регистрировали в тот же день, когда взвешивали птиц. На основе рассчитанного прироста массы тела и потребления корма рассчитывали соотношение корм к приросту (F:G) как кг потребленного корма/кг прироста массы. Общее потребление корма на клетку корректировали с учетом смертности, выбраковки и отклонений. Европейский индекс птицы рассчитывали с использованием следующей формулы:

Европейский индекс птицы=(окончательная масса тела (г)×(100%- смертность%))/((10×период в днях)×общий ККК)

Европейский индекс птицы без учета смертности рассчитывали с использованием следующей формулы:

Европейский индекс птицы=(окончательная масса тела (г)×100)/((10×период в днях)×общий ККК)

На 35 день эксперимента случайным образом отбирали пять птиц в клетке (исключая явные отклонения). Птиц забивали на следующий день. Утром на 36 день этих отобранных птиц убивали посредством CO₂/O₂ и собирали пробы крови, после чего их обескровливали.

Статистический анализ проводили согласно стандартам Provimi для проверки гипотез и расхождения средних значений с использованием дисперсионного анализа ANOVA (версия 1.3). Для сравнения различных видов обработки все показатели подвергали процедуре смешанной модели с применением SAS (версии 9.3, 2008, SAS Institute Inc., Cary, NC) в соответствии со следующей статистической моделью:

Y_ijkl=μ+α_i+b_j+c_k+ac_ik+d_l+ε_ijkl

где:

Y_ijkl=конкретный признак, измеренный для каждой экспериментальной единицы;

μ=общее среднее значение для конкретного признака;

α_i=фиксированный эффект обработки племенных бройлеров (i=1 или 2);

b_j=случайный эффект хранения (j=короткий или длинный);

c_k=случайный эффект всей диаграммы блока (k=1, 2 или 3);

ac_ik=случайное взаимодействие обработки со всей диаграммой блока;

d_l=случайный эффект помещения (l=A или B)

ε_ijkl=вектор ошибки.

Вся диаграммы блока представляет собой блок из двух экспериментальных единиц птичника для племенных бройлеров. Взаимодействие между всей диаграммой блока и обработкой включали в модель для корректировки количества фактических повторностей в единице племенных бройлеров. Смертность рассматривалась как биномиальная величина. Эффекты считались статистически достоверными на основе вероятности Р<0,05, если не указано другое значение вероятности.

Питательный состав рационов соответствовал ожидаемым значениям (предельное отклонение 5% выше или ниже расчетного значения, таблица 10). Наблюдаемое состояние здоровья птиц было хорошим на протяжении всего эксперимента, хотя смертность, включая выбраковку, составляющая 6,9%, была высока по сравнению с фактическими уровнями (от 3 до 4%), а также с предыдущими исследованиями выращивания бройлеров (в среднем 2012: 4,4%). Однако статистически достоверные различия в смертности не обнаружены между двумя видами обработки бройлеров.

В таблице 11 представлено влияние рационов племенных бройлеров (80 ppm витамина Е или 40 ppm витамина Е+40 ppm PROVIOX 50) на смертность, Европейский индекс птицы, среднесуточный прирост массы, среднесуточное потребление корма и корм:прирост для бройлеров породы Кобб 500 FF.

Таблица 11

Влияние рациона племенных бройлеров

EPI=Европейский индекс птицы (окончательная масса тела (г)×(100%- смертность%))/((10×период в днях)×общий ККК): EPI без учета смертности=Европейский индекс птицы без смертности (окончательная масса тела (г)×100%)/((10×период в днях)×общий ККК): ADG=среднесуточный прирост массы: ADFI=среднесуточное потребление корма: F:G=соотношение корм к приросту (кг потребление корма: прирост кг):

¹Клетки племенной птицы с 27-30 несушками и 3-4 петухами

²F:G, скорректированное на 2,181 грамм массы тела в возрасте 35 дней. Коррекция на -0,02 для каждых 100 г лишней массы.

Как показано в таблице 11, показатели продуктивности, среднесуточный прирост массы («ADG»), среднесуточное потребление корма («ADFI») и соотношение корм к приросту (F:G) для потомства статистически достоверно не зависят от рационов племенных бройлеров.

Результаты эксперимента на племенных бройлерах показали, что на продуктивность племенной птицы статистически достоверно не влияет 50% замена уровня витамина Е на PROVIOX 50.

ПРИМЕР 4. ЧАСТИЧНАЯ ЗАМЕНА ВИТАМИНА Е НА PROVIOX 50 В РАЦИОНАХ ПЛЕМЕННЫХ БРОЙЛЕРОВ

Вся племенная птица получала такой же стандартный контрольный рацион во время предварительного экспериментального периода (в возрасте 19-30 недель). Во время экспериментального периода племенная птица получала контрольный рацион, рацион с более высоким содержанием витамина Е или рацион, в котором уровень витамина Е на 50% заменили PROVIOX 50 (таблица 12).

Таблица 12

Экспериментальный дизайн обработок племенных бройлеров

В общей сложности имелось 24 напольные клетки с 30 племенными курочками и 3 петушками (после распределения). Экспериментальный период длился 9 недель; племенная птица получала рацион фазы яйцекладки во время всего экспериментального периода. Корм и воду ограничивали. Количество корма зависело от прироста массы тела. Воду предоставляли в течение двух часов в день, зобы проверяли регулярно для гарантии обеспечения достаточного количества воды.

До начала приготовления композиции рациона партии соевого шрота, пшеничных отрубей, кукурузы грубого помола и пшеницы резервировали и анализировали методом «мокрой химии» на содержание сырого протеина, сухого вещества («СВ»), кальция и фосфора. Кроме того, соевой шрот анализировали на содержание калия, а пшеничные отруби анализировали методом «мокрой химии» на содержание сырой клетчатки, калия и крахмала. БИКС использовали для определения содержания сырой золы, сырого жира, сырой клетчатки и влаги и для перепроверки сырого протеина. Составление рационов было основано на проанализированном содержании питательных веществ зарезервированных компонентов. Одну партию корма использовали в течение всего экспериментального периода.

Базовый рацион (кукуруза - соевый шрот - пшеница и пшеничные отруби) составили на основе рекомендаций по содержанию питательных веществ Provimi для племенных бройлеров. Композиции рационов оптимизировали согласно системе кодов питательных веществ Provimi PNC. Премикс для племенных бройлеров использовали без витамина Е и без добавления других антиоксидантов. Получали различные рационы для петушков и курочек, при этом используя один и тот же экспериментальный дизайн и используя один премикс. Это было сделано, чтобы иметь возможность кормить петушков в соответствии с их потребностями в питательных веществах (более низкими потребностями в сыром протеине, энергии и кальции). Состав экспериментальных рационов и результаты анализа представлены в таблице 13 и таблице 14 соответственно. Рационы были произведены Research Diet Services, Wijk bij Duurstede, Нидерланды. Оба рациона были произведены отдельно с использованием одной партии базового рациона для рационов курочек и одной партии базового рациона для рационов петушков. Рационы были произведены в форме комбикорма.

Таблица 13

Компонентный и питательный состав экспериментальных рационов

¹Приводится на кг рациона перед яйцекладкой: рибофлавин, 7,5 мг; ниацинамид, 30 мг; D-пантотеновая кислота, 9 мг; холина хлорид, 500 мг; DL-α-токоферол, - МЕ; менадион, 3,5 мг; ретинилацетат, 10000 МЕ; холекальциферол, 2000 МЕ; биотин, 100 мкг; фолиевая кислота, 1,0 мг; тиамин, 2,0 мг; пиридоксин HCl, 3,0 мг; цианокобаламин, 25 мкг; FeSO₄×H₂O, 147 мг; MnO₂, 106 мг; CuSO₄×5H₂O, 40 мг; ZnSO₄×H₂O, 206 мг; Na₂SeO₃, 0,88 мг; KI, 1,9 мг; антиоксидант (Oxytrap PXN)), - мг.

Приводится на кг рациона начала яйцекладки: рибофлавин, 9,0 мг; ниацинамид, 40 мг; D-пантотеновая кислота, 12 мг; холина хлорид, 600 мг; DL-α-токоферол, - МЕ; менадион, 2,5 мг; ретинилацетат, 12500 МЕ; холекальциферол, 2500 МЕ; биотин, 150 мкг; фолиевая кислота, 1,5 мг; тиамин, 2,0 мг; пиридоксин HCl, 4,5 мг; цианокобаламин, 30 мкг; FeSO₄×H₂O, 147 мг; MnO₂, 130 мг; CuSO₄×5H₂O, 40 мг; ZnSO₄×H₂O, 206 мг; Na₂SeO₃, 0,88 мг; KI, 2,6 мг; антиоксидант (Oxytrap PXN), - мг.

Приводится на кг рациона фазы яйцекладки: рибофлавин, 6,0 мг; ниацинамид, 30 мг; D-пантотеновая кислота, 9 мг; холина хлорид, 350 мг; DL-α-токоферол, - МЕ; менадион, 2,5 мг; ретинилацетат, 12500 МЕ; холекальциферол, 2500 МЕ; биотин, 100 мкг; фолиевая кислота, 1,0 мг; тиамин, 1,0 мг; пиридоксин HCl, 2,5 мг; цианокобаламин, 25 мкг; FeSO₄×H₂O, 147 мг; MnO₂, 114 мг; CuSO₄×5H₂O, 40 мг; ZnSO₄×H₂O, 206 мг; Na₂SeO₃, 0,88 мг; KI, 2,6 мг; антиоксидант (Oxytrap PXN), - мг.

Таблица 14

Проанализированный питательный состав экспериментальных рационов¹

¹Количество рационов курочек для периода яйцекладки было слишком большое, чтобы производить одной партией, поэтому были произведены две партии с одинаковыми компонентами.

В общей сложности было предоставлено 730 курочек и 92 петушка племенной птицы породы Росс 308 в возрасте 19-недель. При поступлении (в начале предварительного экспериментального периода) курочек и петушков случайным образом распределяли в напольные клетки (3-4 петушка и 30-31 курочка на клетку). Племенную птицу перераспределяли в начале экспериментального периода (30 курочек и 3 петушка на клетку, остальных здоровых петушков помещали в свободную клетку, остальных курочек выбраковывали).

На протяжении всего эксперимента племенную птицу содержали в отдельных напольных клетках для племенных бройлеров (2,60×2,40 м) на подстилке (лен). Каждая клетка была оборудована одной колокольной поилкой, регулируемой по высоте. Корм для курочек подавали посредством двух бункерных кормушек на приподнятый сетчатый пол; корм для петушков подавали посредством желобковой кормушки на другую сторону клетки. Племенную птицу стимулировали светом во время предварительного экспериментального периода в соответствии со стандартами породы. В течение экспериментального периода продолжительность светового дня устанавливали в течение 15 часов в сутки. Температуру и вентиляцию контролировали с помощью компьютера. Температуру устанавливали на 20°С в течение всего периода. Индивидуальный вес птицы регистрировали еженедельно с момента начала предварительного экспериментального периода. В возрасте 31, 33 и 36 недель взвешивали 50% курочек, а в возрасте 35, 37 и 38 недель взвешивали только первые четыре клетки для определения требуемого прироста массы. Предоставляемое количество корма регистрировали ежедневно. Данные по производству яиц и качеству яиц регистрировали ежедневно. % яйценоскости рассчитывали как количество яиц, снесенных на клетку, деленное на количество птицедней экспериментального периода. Валовое производство яиц на клетку в неделю рассчитывали как % яйценоскости (включая яйца второй категории) умноженный на средний вес яйца в клетке. Средний вес яйца определяли на клетку один раз в неделю. Яйца второй категории разделяли на грязные яйца, разбитые яйца, яйца без скорлупы, двухжелтковые яйца, напольные яйца и остальные яйца второй категории. Смертность контролировали каждый день; мертвых животных не заменяли в течение экспериментального периода.

Яйца отправляли в Гентский университет, Бельгия, для анализа ORAC и витамина Е в желтке. Методом, использованным для определения содержания полифенолов, был метод Фолина-Чокальтеу, который описан в Европейской фармакопее, с использованием спектрофотометрии УФ-видимого диапазона. Для анализа ORAC использовали метод, который описан Ou и др. «Development and validation of an improved oxygen radical absorbance capacity assay using fluorescein as the fluorescent probe», Journal of Agricultural and Food Chemistry 49: 4619-4626, (2001) и Huang и др. «High-throughput assay of oxygen radical absorbance capacity (ORAC) using a multichannel liquid handling system coupled with a microplate fluorescence reader in 96-well format», Journal of Agricultural and Food Chemistry 50: 4437-4444, (2002).

Статистический анализ проводили согласно стандартам Provimi для проверки гипотез и расхождения средних значений с использованием дисперсионного анализа ANOVA (версия 1.3). Для сравнения различных видов обработки все показатели подвергали процедуре смешанной модели с применением SAS (версии 9.3, 2008, SAS Institute Inc., Cary, NC, США) в соответствии со следующей статистической моделью:

Y_ij=μ+α_i+b_j+ε_ij

где:

Y_ij=конкретный признак для экспериментальной единицы (клетки);

μ=общее среднее значение для конкретного признака;

α_i=фиксированный эффект обработки (i=1, 2, 3 или 4);

b_j=случайный эффект блока (j=1, 2,..., 6);

ε_ij=вектор ошибки.

Контрасты использовали для сравнения эффектов обработки. Описания контрастов приведены ниже, и характеристики контрастов для ответа на каждый вопрос приведены в таблице 15.

1) Был ли линейный эффект витамина Е?

2) Был ли эффект замены на PROVIOX 50?

3) Зависел ли эффект замены на PROVIOX 50 от дозы?

4) Был ли аддитивный эффект добавления PROVIOX 50 на фоне витамина Е?

Таблица 15

Описание контрастов, используемых для статистического анализа

Питательный состав рационов достоверно соответствовал ожидаемым значениям (таблица 14). Наблюдаемое состояние здоровья птиц было хорошим на протяжении всего эксперимента. Смертность, включая выбраковку, составила 6,1%, что является высоким значением по сравнению со стандартами племенной птицы (общей смертностью и выбраковкой в период яйцекладки 8%). Это обусловлено в основном относительно высоким процентом выбраковки вследствие проблемы с лапками примерно в возрасте 30 недель, что чаще наблюдается у племенной птицы породы Росс. Технические показатели птиц соответствовали стандартам племенной птицы породы Росс 308 (данные не приведены). В течение всего экспериментального периода (в возрасте 30-39 недель) процент разбитых яиц был значительно ниже 47% при частичной замене (50%) витамина Е на PROVIOX 50 (таблица 16). Это предполагает, что наблюдалось улучшение в прочности яичной скорлупы, что является важным, поскольку количество инкубационных яиц возрастет, приводя к более высокой прибыли от племенных бройлеров для фермера.

Технические результаты племенной птицы, которой скармливали экспериментальные рационы (в возрасте от 30 до 39 недель) приведены в таблице 16.

Таблица 16

Технические результаты племенной птицы, которой скармливали экспериментальные рационы (в возрасте от 30 до 39 недель)

В таблице 17 представлены результаты анализа состава яичного желтка на ORAC и уровень витамина Е. Как показано в таблице 17, оценка яичного желтка на ORAC и содержание витамина Е не обнаружила статистически достоверных различий между двумя группами обработки по ORAC, содержанию витамина Е, однако, установила линейное увеличение в связи с увеличением уровня витамина Е в рационе. Установленный индекс пропорциональности составлял около 50% от переноса витамина Е из рациона в яйцо, что согласуется с предыдущими исследованиями (Hossain и др., 1998).

Таблица 17

Результаты анализа состава яичного желтка на ORAC и уровень витамина Е

Результаты этого примера не демонстрировали благоприятного воздействия на любой из оцениваемых показателей при использовании PROVIOX 50 в рационах племенной птицы.

ПРИМЕР 5. ПРОДУКТИВНОСТЬ ЦЫПЛЯТ ИЗ ЯЙЦ ПРИМЕРА 4

В течение шести дней яйца собирали от племенного стада бройлеров из вышеописанного примера 4. Яйца хранили с учетом клетки племенной птицы и дня хранения в течение еще трех дней до начала периода инкубации. Все яйца инкубировали до вылупления цыплят. Все яйца распределяли на 24 лотка и 6 блоков, причем каждый блок представлял собой день хранения. Племенная птица получала один из четырех экспериментальных рационов, как показано в таблице 12.

В общей сложности 2160 яиц, полученных от племенных бройлеров в возрасте 37-38 недель (породы Росс 308) из примера 4, собирали и хранили в единице хранения яиц птичника для племенных бройлеров. В начале периода инкубации яйца взвешивали и распределяли в блоки, каждый блок представлял собой день хранения. Каждый блок состоял из 24 экспериментальных единиц, причем каждая экспериментальная единица означала группу из 15 яиц. Включали только неповрежденные яйца, а яйца, которые были треснутые, грязные или которые имели деформированную скорлупу, исключали из опыта.

Яйца помещали в инкубатор NatureForm NMC 2340 с автоматическим регулированием температуры и относительной влажности. С E0 по E18 яйца помещали в инкубационные тележки, которые состоят из двух полок, вмещающих 13 лотков каждая. Каждый лоток имеет три прокладки для 30 яиц. Во время этого периода начальную температуру в инкубаторе устанавливали на 37,5°С, а относительную влажность на 54%. Температура сначала была 37,5°С на E0 и постепенно снижалась с E12 по E18 с 37,5°С до 36,7°С.

После периода инкубации (E0-E18) яйца перемещали в корзины выводных шкафов с использованием структуры блоков и лотков в инкубаторе. Яйца помещали в секции выводного ящика (на экспериментальную единицу 15 яиц) и потом лоток по порядку в блок (начиная с 1AO заканчивая 24CI). Каждая выводная тележка имеет двенадцать корзин, вмещающих 180 яиц каждая. Яйца из лотков 1-12 помещали в инкубационную машину 1, яйца из лотка 13-24 помещали в инкубационную машину 2. В этот период температуру в инкубаторе устанавливали на 36,7°С, а относительную влажность на 70%.

Вес групп яиц регистрировали на E0. На E7 и E18 все яйца проверяли просвечиванием, и удаляли пустые яйца или яйца, содержащие мертвые эмбрионы (ложный неоплод E0-E7, замершие E8-E18). На E18 яйца перемещали в выводные корзины после проверки просвечиванием. На стадии вылупливания (E21) регистрировали количество мертвых цыплят, эмбрионов «задохликов» (эмбрионов погибших на последних стадиях развития) (E19-E21) и яиц с наклевом. На каждую повторность регистрировали количество вылупившихся цыплят, а также средний вес цыпленка. Вылупляемость рассчитывали как процент от общего количества отложенных яиц. Пол устанавливали определением пола по перьям, цыплят-курочек умерщвляли посредством СО₂ и утилизировали в соответствии с местными правилами. Пять цыплят-петушков на экспериментальную единицу отбирали для периода выращивания и распределяли в клетки для выращивания бройлеров. Отбирали только цыплят со средней массой тела, полностью сухих, демонстрирующих активное движение и с закрытым пупочным кольцом. После этого отбора одного цыпленка-петушка из каждой экспериментальной единицы отбирали для вскрытия. Отобранных цыплят индивидуально взвешивали и убивали смещением шейных позвонков для определения веса остаточного желточного мешка, массы тела без желтка («YFBM»), веса печени, длины цыпленка и длины лапки для обеих лапок. Печень сразу же помещали в сухой лед и после вскрытия хранили при -20°С для дальнейшего анализа («СОД и GSSG»).

Относительную асимметрию рассчитывали по следующей формуле:

RA=(|L-R|/[(L+R)/2])×100

где:

L=длина левой лапки

R=длина правой лапки.

Для того чтобы оценить, существуют ли статистически достоверные различия между различными видами обработки бройлеров, все показатели также подвергали анализу смешанной модели с применением SAS (версии 9.3, SAS Institute Inc., Cary, NC, 2008) в соответствии со следующей статистической моделью:

Y_ijk=μ+α_i+b_j+α(c)_ik+ε_ijk

где:

Y_ijk=конкретный признак на экспериментальную единицу (повторность 15 яиц);

μ=общее среднее значение для конкретного признака;

α_i=фиксированный эффект обработки (i=1-4);

b_j=случайный эффект блок/день хранения (j=1-6);

α(c)_ik=случайный иерархический эффект на клетку для содержания племенной птицы в пределах обработки (k=1-24);

ε_ijk=вектор ошибки.

Иерархический эффект на клетку для содержания племенной птицы в пределах обработки включали в модель для корректировки количества экспериментальных единиц, используемых на обработку племенных бройлеров. С учетом дизайна опыта эффект дня хранения полностью соединяли с эффектом блока (места нахождения в инкубаторе). Контрасты использовали для сравнения эффектов обработки. Описания контрастов приведены ниже, и характеристики контрастов для ответа на каждый вопрос приведены в таблице 18.

1) Был ли линейный эффект витамина Е?

2) Был ли квадратичный эффект витамина Е?

3) Был ли эффект замены на PROVIOX 50?

4) Зависел ли эффект замены на PROVIOX 50 от дозы?

5) Был ли аддитивный эффект добавления PROVIOX 50 на фоне витамина Е?

Таблица 18

Описание контрастов, используемых для статистического анализа

Средний вес яйц в начале опыта составлял 63,1 грамм на яйцо. Средняя вылупляемость (90,4% от общего количества) была выше средней по сравнению со стандартами племенной птицы в возрасте 38 недель породы Росс 308 (87,2% от общего количества). Данные результаты свидетельствуют, что средняя плодовитость и вылупляемость и процесс инкубации являются хорошими в текущем эксперименте.

Результаты проверки просвечиванием показали относительно высокую раннюю эмбриональную смертность и очень низкое количество пустых яиц (соответственно 5,5 и 0,5% от общего количества отложенных яиц, таблица 19), свидетельствуя, что производство спермы у петушков было хорошим. Никаких статистически достоверных различий по вылупляемости, пустым яйцам, проценту ранней, средней или поздней эмбриональной смертности не наблюдалось (фиг.4 и 5, таблица 19).

Таблица 19

Влияние обработки племенных бройлеров на эмбриональную смертность и показатель вылупляемости эмбрионов породы Росс 308

Вылупившиеся цыплята не демонстрировали никаких статистически достоверных различий в среднем и относительном весе цыплят (таблица 20). Кроме того, никакого влияния обработки не обнаружили по нескольким показателям качества цыплят (YFBM, длине цыпленка и относительной асимметрии). Набор OXISELECT для анализа активности супероксиддисмутазы («СОД») и набор OXISELECT для анализа («ГССГ») общего глутатиона (ГСН/ГССГ), имеющиеся на рынке от Cell Biolabs, Inc., San Diego, CA, США, использовали для анализа печени цыплят. Никакого статистически достоверного влияния не обнаружили при анализе СОД и ГССГ печени. Однако при сравнении количественных различий обнаружили, что частичная замена витамин Е на PROVIOX 50 при низком уровне (80 ppm витамина Е) повышала антиоксидантный статус эмбрионов.

Таблица 20

Влияние обработки племенных бройлеров на эмбриональное развитие и показатели качества цыплят при вылуплении эмбрионов породы Росс 308

Никакого статистически достоверного влияния не обнаружили ни на один из оцениваемых показателей. Кроме того, никакого статистически достоверного влияния не обнаружили на показатели вылупившихся цыплят. Никакого статистически достоверного влияния не обнаружили на результаты анализа ферментов печени для СОД и ГССГ. Однако при низком уровне витамина Е замена оказалась эффективной для повышения антиоксидантной способности у эмбрионов. Можно сделать вывод, что замену до 50% витамина Е в рационе на PROVIOX 50 может использовать для снижения общей себестоимости кормления для этих рационов без ухудшения вылупляемости и плодовитости или качества вылупившихся цыплят, по меньшей мере, в экспериментальном периоде в возрасте 30-38 недель.

ПРИМЕР 6. ВЫРАЩИВАНИЕ ЦЫПЛЯТ ИЗ ПРИМЕРА 5

В данном примере вылупившихся цыплят выращивали до возраста убоя и оценивали продуктивность. Целью текущего эксперимента было оценить влияние на продуктивность потомства рациона племенных бройлеров с витамином Е по сравнению с 50% заменой витамина Е на PROVIOX 50.

Оценивали четыре вида обработки племенных бройлеров (таблица 12). Вылупившихся цыплят из примера 5 выращивали из яиц, полученных в результате эксперимента с племенными бройлерами из примера 4, при этом племенная птица получала контрольный рацион, рацион с высоким содержанием витамина Е или рацион, в котором уровень витамина Е (при обоих уровнях) на 50% заменили PROVIOX 50. В текущем эксперименте такой же базовый рацион скармливали всем бройлерам. Экспериментальный период был разделен на стартовую фазу (0-14 дней) и ростовую фазу (14-35 дней). В возрасте 14 дней всех птиц перевели на их ростовой рацион.

До начала составления рационов компоненты (кукурузу и соевый шрот) резервировали и анализировали на содержание сырого протеина («СП») (ИСО 16634) и кальция (ИСО 27085:2009, в двух повторностях) в лаборатории Provimi B.V., Роттердам, Нидерланды. Кроме того, кукурузу анализировали на содержание фосфора (ИСО 27085:2009; в двух повторностях), а соевый шрот на содержание калия (ИСО 27085:2009). Анализ методом спектроскопии отражения в ближней инфракрасной области (ИСО 12099) использовали для определения содержания сухого вещества («СВ»), сырого жира, сырой клетчатки и сырой золы.

Стартовые и ростовые рационы были произведены Research Diet Services (RDS, Wijk bij Duurstede, Нидерланды). Стартовые рационы гранулировали в гранулы размером 2,5 мм, а ростовые рационы в гранулы размером 3 мм с добавлением пара (около 80°C). Рационы составляли на основе проанализированных показателей компонентов и для удовлетворения потребности бройлеров в питательных веществах (норм Cargill, Incorporated CPN EMEA). Стартовые и ростовые рационы содержали 2750 и 2850 ккал КОЭ бройлер г×кг^-1 и 10,20 и 9,70 г×кг^-1 кажущегося фекально усвояемого (AFD) лизина, соответственно. Составы экспериментальных стартовых и ростовых рационов приводятся в таблице 21. Результаты анализа представлены в таблице 22.

Таблица 21

Компонентный и питательный состав стартового и ростового рационов

¹Приводится на кг стартового рациона: витамин А (ретинилацетат), 12000 МЕ; витамин D3 (холекальциферол), 5000 МЕ; витамин Е (DL-α-токоферол), 30 мг; витамин К3 (менадион), 2,3 мг; витамин В1 (тиамин), 1,0 мг; витамин В2 (рибофлавин), 4,5 мг; витамин B6 (пиридоксин HCl), 2,7 мг; витамин B12 (цианокобаламин), 20 мкг; ниацин, 40 мг; D-пантотеновая кислота, 9 мг; холина хлорид, 500 мг; фолиевая кислота, 0,5 мг; биотин, 100 мкг; FeSO₄×H₂O, 150 мг; CuSO₄×5H₂O, 40 мг; MnO, 100 мг; ZnSO₄×H₂O, 145 мг; KI, 2,0 мг; Na₂SeO₃, 0,56 мг; антиоксидант (Oxytrap PXN), 125 мг. Приводится на кг ростового рациона: витамин А (ретинилацетат), 10000 МЕ; витамин D3 (холекальциферол), 2000 МЕ; витамин Е (DL-α-токоферол), 20 мг; витамин К3 (менадион), 2,3 мг; витамин В1 (тиамин), 0,8 мг; витамин В2 (рибофлавин), 4,5 мг; витамин B6 (пиридоксин HCl), 1,9 мг; витамин B12 (цианокобаламин), 20 мкг; ниацин, 30 мг; D-пантотеновая кислота, 8 мг; холина хлорид, 400 мг; фолиевая кислота, 0,5 мг; биотин, 50 мкг; FeSO₄×H₂O, 150 мг; CuSO₄×5H₂O, 40 мг; MnO, 100 мг; ZnSO₄×H₂O, 145 мг; KI, 1,9 мг; Na₂SeO₃, 0,50 мг; антиоксидант (Oxytrap PXN), 125 мг.

Таблица 22

Рассчитанный и проанализированный питательный состав стартовых и ростовых рационов

Эксперимент проводили в единице птичника для выращивания бройлеров, состоящем из двух помещений с 36 клетками каждое. В общей сложности 720 суточных цыплят-петушков породы Росс 308, полученных от племенных бройлеров в возрасте 38 недель (пример 4), отбирали случайным образом из общего количества вылупившихся цыплят-петушков из примера 5. При отборе цыплят выбирали случайным образом из различных экспериментальных единиц в инкубаторе, обеспечивая сохранение без повреждений экспериментальной единицы птичника для племенных бройлеров, размещая цыплят из одной экспериментальной единицы птичника для племенных бройлеров в одну клетку птичника для выращивания. В каждой клетке содержали 30 цыплят с начальным индивидуальной МТ 43,3±0,81 и 43,3±0,68 г для соответственно единицы А и единицы B.

Клетки (90×225 см) имели приподнятый пол, состоящий из пластиковых сеток, покрытый 2-сантиметровым слоем древесной стружки. Каждая клетка была оборудована двумя наборами из двух регулируемых ниппельных поилок и кормушки, которые были расположены внутри клетки в течение первых 13 дней. Начиная с 14 дня, корм подавали посредством желобковой кормушки в передней части клетки. И корм, и воду предоставляли вволю на протяжении всего исследования. Непрерывное искусственное освещение поддерживали в течение 23 часов в сутки в течение первых трех дней эксперимента, 20 часов в сутки с четвертого по седьмой день и 18 часов в сутки в течение оставшейся части эксперимента. Температуру, относительную влажность и вентиляцию контролировали с помощью компьютера, при этом в первые тринадцать дней температуру постепенно снижали на 0,5°С в сутки, с четырнадцатого дня по 35 день температуру постепенно снижали примерно на 0,4°С с 34,0°C в день поступления (суточных цыплят) до конечной температуры 20,4°C в конце эксперимента (35 день).

Цыплят вакцинировали методом распыления против болезни Ньюкасла (вакцина Poulvac NDW, Intervet, Boxmeer, Нидерланды) в возрасте 15 дней.

Индивидуальный вес птиц регистрировали в начале эксперимента (0 день) и в возрасте 14, 21, 28 и 35 дней. Кроме того, потребление корма для каждой клетки регистрировали в тот же день, когда взвешивали птиц. На основе рассчитанного прироста массы тела и потребления корма рассчитывали соотношение корм к приросту (F:G) как кг потребленного корма/кг прироста массы. Общее потребление корма на клетку корректировали с учетом смертности, выбраковки и отклонений. Европейский индекс птицы рассчитывали с использованием следующей формулы:

Европейский индекс птицы=(окончательная масса тела (г)×(100%- смертность%))/((10×период в днях)×общий ККК)

Европейский индекс птицы без учета смертности рассчитывали с использованием следующей формулы:

Европейский индекс птицы=(окончательная масса тела (г)×100)/((10×период в днях)×общий ККК)

Все показатели подвергали процедуре смешанной модели посредством SAS (версии 9.3, SAS Institute Inc., Cary, NC, США) в соответствии со следующей статистической моделью:

Y_ij=μ+α_i+b_j+ε_ij

где:

Y_ij=конкретный признак, измеренный для каждой экспериментальной единицы;

μ=общее среднее значение для конкретного признака;

α_i=фиксированный эффект обработки племенных бройлеров (i=1-4);

b_j=случайный эффект блока (j=1-6);

ε_ij=вектор остаточных ошибок.

Контрасты использовали для сравнения эффектов обработки. Описания контрастов приведены ниже, и характеристики контрастов для ответа на каждый вопрос приведены в таблице 23.

1) Был ли линейный эффект витамина Е?

2) Был ли эффект замены на PROVIOX 50?

3) Зависел ли эффект замены на PROVIOX 50 от дозы?

4) Был ли аддитивный эффект добавления PROVIOX 50 на фоне витамина Е?

Таблица 23

Описание контрастов, используемых для статистического анализа

Питательный состав рационов соответствовал ожидаемым значениям (таблица 22). Наблюдаемое состояние здоровья птиц было хорошим на протяжении всего эксперимента. Смертность, включая выбраковку, составила 1,4%, что является низким значением по сравнению с фактическими уровнями (от 3 до 4%), а также с предыдущими исследованиями по выращиванию бройлеров (в среднем 2012: 4,5%).

Неожиданно окончательная масса тела потомства, среднесуточный прирост и потребление корма были значительно выше при частичной замене витамина Е на PPROVIOX 50 в рационе племенных бройлеров (соответственно 4,2, 4,8 и 3,8%), это не зависит от уровня включения, как показано в таблице 24.

Таблица 24

Влияние обработки племенных бройлеров на смертность потомства, МТ, европейский индекс птицы (EPI), среднесуточный прирост (ADG), среднесуточное потребление корма (ADFI) и соотношение корм к приросту (F:G)

Смертность=процент общей смертности и выбраковки по отношению к количеству птиц на 0 день; EPI=((окончательная масса тела (г)×(100%-смертность%))/((10×период в днях)×общий ККК): EPI без учета смертности=((окончательная масса тела (г)×100%)/((10×период в днях)×общий ККК); F:G=потребление корма г: прирост г).

¹Отдельная клетка с 30 птицами.

²n=5 для вит. Е дозы 1 и Proviox дозы 2.³n=5 для вит. Е дозы 1 и n=4 для Proviox дозы 2.⁴n=5 для Proviox дозы 2.⁵n=5 для вит. Е дозы 1.

⁷F:G, скорректированное с учетом МТ=F:G, скорректированное на 2,176 грамм массы тела в возрасте 35 дней. Коррекция на -0,02 для каждых 100 г лишней массы.

нд=P>0,10; *=P<0,10; **=P<0,01.

Как показано в таблице 24, повышение соотношения корм к приросту было статистически достоверно более значительно при замене высокого уровня включения, при этом замена привела к 1,9% более эффективного использование кормов. Такой эффект был еще более выраженным при корректировке с учетом окончательной массы тела (3,9% более эффективного потомства; фиг.6). В целом соотношение корм к приросту было статистически достоверно (1,4%) хуже для обработки с высоким содержанием витамина Е по сравнению с обработкой с низким содержанием витамина Е. Кроме того, данный эффект был более выраженным при корректировке с учетом окончательной массы тела (2,6%).

Непонятно, почему более высокий уровень витамина Е в рационе племенных бройлеров приводит к менее эффективному потомству. Опубликованные исследования рационов племенных бройлеров с учетом продуктивности потомства в основном сообщают использованные уровни витамина Е от 0 до 100 ppm, в текущем исследовании высокий уровень включения составил 160 ppm. На практике используются даже более высокие уровни иногда, однако внимание сосредоточено на количестве вылупившихся цыплят на племенную птицу и в меньшей степени, или даже отсутствует, на продуктивности потомства. Возможное объяснение более низкой продуктивности потомства может состоять в том, что витамин Е был передозирован в рационе племенной птицы, тем самым программируя потомство на менее эффективное поглощение витамина Е, или менее эффективную антиоксидантную защиту. Обеспечивая PROVIOX 50 в рационе племенных бройлеров, другие антиоксидантные источники доступны для потомства (водорастворимые источники). Это может увеличить антиоксидантный статус потомства, следовательно, позволяя ему расти более и более эффективным.

Результаты текущего исследования показывают, что увеличение витамина Е в рационе племенных бройлеров от 80 до 160 ppm приводит к менее эффективному потомству. Неожиданно было обнаружено, что частичная 50% замена витамина Е на PROVIOX 50 привела к статистически достоверно более высокому общему росту и потреблению корма (независимо от дозы), а также к более эффективному потомству при высоком уровне включения.

ПРИМЕР 7. ЧАСТИЧНАЯ ЗАМЕНА ВИТАМИНА Е В РАЦИОНАХ ПЛЕМЕННЫХ БРОЙЛЕРОВ

Вся племенная птица получала такой же рацион во время предварительного экспериментального периода (в возрасте 49-56 недель). Во время экспериментального периода племенная птица получала контрольный рацион или рацион, в котором 50% витамина Е заменили на PROVIOX 50 (таблица 25).

Таблица 25

Экспериментальный дизайн обработок племенных бройлеров

*Эквивалентность витамина E.

В общей сложности имелось двенадцать напольных клеток с приблизительно тридцатью курочками и тремя петушками племенной птицы на используемую клетку. Экспериментальный период длился восемь недель; племенная птица получала рацион фазы яйцекладки во время всего экспериментального периода. Корм и воду ограничивали. Количество корма зависело от среднего прироста массы тела. Уровни кормления во время предварительного экспериментального периода и экспериментального периода представлены на фиг.7. Воду предоставляли в течение двух часов в день, зобы проверяли регулярно для гарантии обеспечения достаточного количества воды.

До начала приготовления композиции рациона партии соевого шрота, пшеничных отрубей, кукурузы грубого помола и пшеницы резервировали и анализировали методом «мокрой химии» на содержание сырого протеина, сухого вещества («СВ»), кальция и фосфора. Кроме того, соевой шрот анализировали на содержание калия, а пшеничные отруби анализировали методом «мокрой химии» на содержание сырой клетчатки, калия и крахмала. Анализ методом спектроскопии отражения в ближней инфракрасной области использовали для определения содержания сырой золы, сырого жира, сырой клетчатки и влаги и для перепроверки сырого протеина. Составление рационов было основано на проанализированном содержании питательных веществ зарезервированных компонентов. Одна партию корма использовали в течение всего экспериментального периода.

Базовый рацион (кукуруза - соевый шрот - пшеница и пшеничные отруби) составили на основе рекомендаций по содержанию питательных веществ Provimi для племенных бройлеров. Композиции рационов оптимизировали согласно системе кодов питательных веществ Provimi PNC. Премикс для племенных бройлеров использовали без витамина Е и без добавления других антиоксидантов. Получали разные рационы для петушков и курочек, при этом используя один и тот же экспериментальный дизайн и состав премикса. Это было сделано, чтобы иметь возможность кормить петушков в соответствии с их потребностями в питательных веществах (более низкими потребностями в сыром протеине, энергии и кальции). Состав экспериментальных рационов и результаты анализа представлены в таблице 26 и таблице 27 соответственно. Рационы были произведены Research Diet Services (RDS, Wijk bij Duurstede, Нидерланды). Рационы были произведены отдельно с использованием одной партии базового рациона для рационов курочек и одной партии базового рациона для рационов петушков. Рационы были произведены в виде комбикорма.

Таблица 26

Компонентный и питательный состав экспериментальных рационов

¹Приводится на кг рациона фазы яйцекладки: рибофлавин, 6,0 мг; ниацинамид, 30 мг; D-пантотеновая кислота, 9 мг; холина хлорид, 350 мг; DL-α-токоферол, - МЕ; менадион, 2,5 мг; ретинилацетат, 12500 МЕ; холекальциферол, 2500 МЕ; биотин, 100 мкг; фолиевая кислота, 1,0 мг; тиамин, 1,0 мг; пиридоксин HCl, 2,5 мг; цианокобаламин, 25 мкг; FeSO₄×H₂O, 147 мг; MnO₂, 114 мг; CuSO₄, 40 мг; ZnSO₄×H₂O, 206 мг; Na₂SeO₃, 0,88 мг; KI, 2,6 мг; антиоксидант (Oxytrap PXN), - мг.

Таблица 27

Проанализированный питательный состав экспериментальных рационов

В общей сложности 730 курочек и 92 петушка племенной птицы породы Росс 308 было закуплено посредством промышленной племенной организации (Pluvita B.V., Apeldoorn, Нидерланды). При поступлении (в начале предварительного экспериментального периода) курочек и петушков случайным образом распределяли в напольные клетки (3-4 петушка и 30-31 курочка на клетку). Племенную птицу перераспределяли в начале периода яйцекладки (30 курочек и 3 петушка на клетку). Остальных здоровых петушков помещали в свободную клетку, а остальных курочек выбраковывали. Животных не перераспределяли в начале следующих (предварительных) экспериментальных периодов.

На протяжении всего эксперимента племенную птицу содержали в напольных клетках для племенных бройлеров (2,60×2,40 м) на подстилке (лен). Каждая клетка была оборудована одной автоматической поилкой, регулируемой по высоте. Корм для курочек подавали посредством двух бункерных кормушек на приподнятый сетчатый пол; корм для петушков подавали посредством желобковой кормушки на другую сторону клетки.

Племенную птицу стимулировали светом во время первого предварительного экспериментального периода в соответствии со стандартами породы. В течение экспериментального периода продолжительность светового дня устанавливали в течение 15 часов в сутки. Температуру и вентиляцию контролировали с помощью компьютера. Температуру устанавливали на 20°С в течение всего периода. Температуру в помещении постоянно фиксировали в течение всего эксперимента с использованием регистратора данных, расположенного внутри птичника. Индивидуальный вес птицы регистрировали в возрасте 49, 55, 60 и 64 недель. В возрасте 51, 53, 58 и 62 недель взвешивали 50% курочек и всех петушков, а в оставшиеся недели взвешивали только первые четыре клетки для определения требуемого прироста массы. Предоставляемое количество корма регистрировали ежедневно. Данные по производству яиц и качеству яиц регистрировали ежедневно. % яйценоскости рассчитывали как количество яиц, снесенных на клетку, деленное на количество птицедней экспериментального периода. Валовое производство яиц на клетку в неделю рассчитывали как % яйценоскости (включая яйца второй категории) умноженный на средний вес яйца в клетке. Средний вес яйца определяли на клетку один раз в неделю. Яйца второй категории разделяли на грязные яйца, разбитые яйца, яйца без скорлупы, двухжелтковые яйца, напольные яйца и остальные яйца второй категории. Смертность контролировали каждый день; мертвых животных не заменяли в течение экспериментального периода.

Статистика

Статистический анализ проводили согласно стандартам Provimi для проверки гипотез и расхождения средних значений с использованием дисперсионного анализа ANOVA (версия 1.3). Для сравнения различных видов обработки все показатели подвергали процедуре смешанной модели с применением SAS (версии 9.3, SAS Institute Inc., Cary, NC, 2008) в соответствии со следующей статистической моделью:

Y_ij=μ+α_i+b_j+ε_ij

где:

Y_ij=конкретный признак для экспериментальной единицы (клетки);

μ=общее среднее значение для конкретного признака;

α_i=фиксированный эффект обработки (i=1 или 2);

b_j=случайный эффект блока (j=1, 2,..., 6);

ε_ij=вектор ошибки.

Контрасты использовали для сравнения эффектов обработки. Описания контрастов приведены ниже, и характеристика контрастов для ответа на вопрос приведена в таблице 28.

1) Был ли эффект PROVIOX 50?

Таблица 28

Описание контраста, используемого для статистического анализа

Питательный состав рационов соответствовал ожидаемым значениям, как показано в таблице 27. Наблюдаемое состояние здоровья птиц было хорошим на протяжении всего эксперимента. Смертность, включая выбраковку, составила 6,7%, что является средним показателем по сравнению со стандартами племенной птицы (общей смертностью и выбраковкой в течение 40 недель периода яйцекладки 8%). Технические показатели соответствовали стандартам племенной птицы породы Росс 308. Вариация в пределах обработок (LSD), выраженная в процентах от среднего прироста массы птицы, составляла для всего экспериментального периода 13,0% и 1,6% для соответственно процента яйценоскости и веса яйца.

Таблица 29

Технические результаты племенной птицы, которой скармливали экспериментальные рационы

Однако, как показано на фиг.8, при использовании PROVIOX 50 в рационах племенной птицы процент яйценоскости количественно увеличился на 8,8% по сравнению с контрольным рационом. Для всего экспериментального периода никакого статистически достоверного влияния на вес яйца не обнаружили, что согласуется с предыдущими исследованиями.

Как показано в таблице 30, относительный вес яичной скорлупы статистически достоверно увеличился на 3,8% при частичной замене (50%) витамина Е на PROVIOX 50. Это также относится к количественному повышению прочности скорлупы яиц (7,9%). В количественном выражении также было на 50% меньше разбитых яиц в экспериментальный период при частичной замене витамина Е на PROVIOX 50.

Таблица 30

Результаты анализа показателей качества яиц племенной птицы, которой скармливали экспериментальные рационы

Процент яйценоскости количественно увеличился на 8,8% при частичной замене (50%) витамина Е на PROVIOX 50. Никакого статистически достоверного влияния на общий средний вес яйца не обнаружили. Относительный вес яичной скорлупы увеличился на 3,8% при частичной замене (50%) витамина Е на PROVIOX 50; это также относится к количественному повышению прочности скорлупы яиц (7,9%).

ПРИМЕР 8. ПРОДУКТИВНОСТЬ ЦЫПЛЯТ ИЗ ЯИЦ ПРИМЕРА 7

В течение одиннадцати дней яйца собирали от племенного поголовья бройлеров из примера 7. Они хранились с учетом клетки племенной птицы и дня хранения. Все яйца инкубировали до вылупления цыплят. Яйца распределяли на 12 лотков и 6 блоков, причем каждый блок представлял собой день хранения. Племенная птица получала один из двух экспериментальных рационов, как показано в таблице 31.

Таблица 31

Экспериментальный дизайн обработок племенных бройлеров

В общей сложности 1080 яиц, полученных от племенных бройлеров в возрасте 63 недель из примера 7, собирали и хранили в единице хранения яиц птичника для племенных бройлеров в инновационном центре Velddriel. В начале периода инкубации яйца взвешивали и распределяли в блоки, каждый блок представлял собой комбинацию дня хранения. Каждый блок состоял из 12 экспериментальных единиц, причем каждая экспериментальная единица означала группу из 15 яиц. Включали только неповрежденные яйца; треснутые, грязные или яйца с деформированной скорлупой исключали из опыта.

Яйца помещали в инкубатор NatureForm NMC 2340 с автоматическим регулированием температуры и относительной влажности. С E0 по E18 яйца помещали в инкубационные тележки, которые состоят из двух полок, вмещающих 13 лотков каждая. Каждый лоток имеет три прокладки для 30 яиц. Во время этого периода начальную температуру в инкубаторе устанавливали на 37,5°С, а относительную влажность на 54%. Температуру устанавливали на основе температурного профиля, начиная при 37,5°С на E0 и постепенно снижая с E12 по E18 с 37,5°С до 36,7°С.

После периода инкубации (E0-E18) яйца перемещали в корзины выводных шкафов с использованием структуры блоков и лотков в инкубаторе. Температуру в инкубаторе устанавливали на 36,7°С, а относительную влажность на 70%. Температуру в инкубаторе постоянно фиксировали в течение всего эксперимента с использованием регистраторов данных, расположенных в различных местах внутри инкубатора.

Вес групп яиц регистрировали на E0, E7 и E18. На E7 и E18 все яйца проверяли просвечиванием, и удаляли пустые яйца или яйца, содержащие мертвые эмбрионы (ложный неоплод E0-E7, замершие E8-E18). На E18 яйца перемещали в выводные корзины после проверки просвечиванием. На стадии вылупливания (E21) регистрировали количество мертвых цыплят, эмбрионов «задохликов» (E19-E21) и яиц с наклевом. Количество вылупившихся цыплят регистрировали на каждую повторность, а также средний вес цыпленка. Вылупляемость рассчитывали как процент от общего количества отложенных яиц. Пол устанавливали определением пола по перьям, цыплят-курочек использовали для вскрытия. Всех цыплят-петушков отбирали для периода выращивания и распределяли в клетки для выращивания бройлеров. Отбирали только полностью сухих цыплят, демонстрирующих активное движение и с закрытым пупочным кольцом. Одного цыпленка-курочку из каждой экспериментальной единицы отбирали для вскрытия. Остальных цыплят умерщвляли посредством СО₂ и утилизировали в соответствии с местными правилами. Используемых для вскрытия цыплят индивидуально взвешивали и убивали смещением шейных позвонков для определения веса остаточного желточного мешка, массы тела без желтка («YFBM»), длины цыпленка и длины лапки для обеих лапок. Относительную асимметрию рассчитывали по следующей формуле:

RA=(|L-R|/[(L+R)/2])×100

где:

L=длина левой лапки

R=длина правой лапки.

Для сравнения различных видов обработки показатели прироста массы (нормально распределенные) и вылупляемости и эмбриональной смертности (биномиально распределенные) подвергали анализу смешанной модели с применением SAS версии 9.3, 2008 (SAS Institute Inc., Cary, NC) в соответствии со следующей статистической моделью:

Y_ijk=μ+α_i+b_j+α(c)_ik+ε_ijk

где:

Y_ijk=конкретный признак на экспериментальную единицу (повторность 15 яиц);

μ=общее среднее значение для конкретного признака;

α_i=фиксированный эффект обработки племенной птицы (i=1-2);

b_j=случайный эффект блок/день хранения (j=1-6);

α(c)_ik=случайный иерархический эффект на клетку для содержания племенной птицы в пределах обработки (k=1-12);

ε_ijk=вектор ошибки.

Иерархический эффект на клетку для содержания племенной птицы в пределах обработки включали в модель для корректировки количества экспериментальных единиц, используемых для обработки племенных бройлеров. С учетом дизайна опыта эффект дня хранения полностью соединяли с эффектом блока (места нахождения в инкубаторе). Контрасты использовали для сравнения эффектов обработки. Описание контраста приведено ниже, и характеристика контраста для ответа на вопрос приведена в таблице 32.

1) Был ли эффект PROVIOX 50?

Таблица 32

Описание контраста, используемого для статистического анализа

Средний вес яйц в начале опыта составлял 71,2 грамм на яйцо, немного выше стандартов племенной птицы в возрасте 63 недель породы Росс 70,3 грамм на яйцо. Средняя вылупляемость (72,0% от общего количества) была немного ниже средней по сравнению со стандартами племенной птицы в возрасте 63-недель породы Росс (73% от общего количества). Вариация в пределах обработок (LSD), выраженная в процентах от среднего прироста массы птицы, была высокой для веса цыпленка и массы тела без желтка (соответственно 6,7% и 6,4%) по сравнению с предыдущими опытами (соответственно 3,5% и 3,7%) с использованием девяти повторностей на обработку).

Как показано в таблице 33, никакого статистически достоверного влияния на общую вылупляемость и вылупляемость оплодотворенных яиц не обнаружили.

Поздняя эмбриональная смертность (Е18-Е21) была статистически достоверно ниже при обработке PROVIOX 50 по сравнению с контрольным рационом. Однако на ранних стадиях инкубации (Е0-Е7) смертность была немного выше при обработке PROVIOX 50 по сравнению с контрольным рационом; таким образом, никакого статистически достоверного влияния на вылупляемость не обнаружили.

Таблица 33

Влияние обработки племенных бройлеров и инкубатора на эмбриональную смертность и вылупляемость*

Как показано в таблице 34, средний вес цыпленка при выводе был статистически достоверно выше при обработке PROVIOX 50 по сравнению с контрольным рационом. С учетом поправки на первоначальный вес яиц он все равно был статистически достоверно выше по сравнению с контрольной обработкой. Относительный вес остаточного желточного мешка при выводе был статистически достоверно ниже при обработке PROVIOX 50 по сравнению с контрольной обработкой, предполагая увеличение использования желтка.

Таблица 34

Влияние обработки племенных бройлеров на эмбриональное развитие и показатели качества цыпленка при выводе эмбрионов породы Росс 308

Никакого статистически достоверного влияния на общую вылупляемость или вылупляемость оплодотворенных яиц не обнаружили. Обогащение рациона племенной птицы PROVIOX 50 статистически достоверно привело к потомству с большим весом и увеличению использования желтка.

ПРИМЕР 9. ВЫРАЩИВАНИЕ ЦЫПЛЯТ ИЗ ПРИМЕРА 8

Оценивали две обработки корма племенных бройлеров (таблица 35).

Таблица 35

Экспериментальный дизайн обработок племенных бройлеров

*Эквивалентность витамина E.

Вылупившихся цыплят из примера 8 выращивали из яиц, полученных в результате эксперимента с племенными бройлерами из примера 7, при этом племенная птица получала контрольный рацион или рацион, в котором 50% витамина Е заменили на PROVIOX 50. В данном примере такой же базовый рацион скармливали всем бройлерам. Экспериментальный период был разделен на стартовую фазу (0-14 дней) и ростовую фазу (14-35 дней). В возрасте 14 дней всех птиц переводили на их ростовой рацион.

До начала составления рационов компоненты (кукурузу и соевый шрот) резервировали и анализировали на содержание сырого протеина («СП») (ИСО 16634) и кальция (ИСО 27085:2009) в лаборатории Provimi B.V., Роттердам, Нидерланды. Кукурузу анализировали на содержание фосфора (ИСО 27085:2009), а соевый шрот на содержание калия (ИСО 27085:2009). Анализ методом спектроскопии отражения в ближней инфракрасной области (ИСО 12099) использовали для определения содержания сухого вещества, сырого жира, сырой клетчатки и сырой золы.

Стартовые и ростовые рационы оптимизировали в рамках и на основе новой системы Cargill Nutrient System («CNS») и практикуемых кормов для птицы (TD 2014 1). Композиции стартовых и ростовых рационов были получены из практикуемых кормов P_BRHIGH51 и P_BRHIGH52 соответственно. В соответствии с матрицей CNS рост КОЭ объясняется использованием фермента NSP (Hostazyme X, 100 г/Мт; +40 ккал/кг). Фермент фитаза (Phzyme 10000 TPT) был включен в оба рациона при PHY IDX 9. Составы экспериментальных стартовых и ростовых рационов приведены в таблице 36. Результаты анализа представлены в таблице 37. Стартовые и ростовые рационы были произведены Research Diet Services (RDS, Wijk bij Duurstede, Нидерланды). Стартовые рационы гранулировали в гранулы размером 2,5 мм, а ростовые рационы в гранулы размером 3 мм с добавлением пара (около 80°C).

Таблица 36

Компонентный и питательный состав рационов

¹Приводится на кг стартового рациона: витамин А (ретинилацетат), 12000 МЕ; витамин D3 (холекальциферол), 5000 МЕ; витамин Е (DL-α-токоферол), 30 мг; витамин К3 (менадион), 2,3 мг; витамин В1 (тиамин), 1,0 мг; витамин В2 (рибофлавин), 4,5 мг; витамин B6 (пиридоксин HCl), 2,7 мг; витамин B12 (цианокобаламин), 20 мкг; ниацин, 40 мг; D-пантотеновая кислота, 9 мг; холина хлорид, 500 мг; фолиевая кислота, 0,5 мг; биотин, 100 мкг; FeSO₄×H₂O, 150 мг; CuSO₄×5H₂O, 40 мг; MnO, 100 мг; ZnSO₄×H₂O, 145 мг; KI, 2,0 мг; Na₂SeO₃, 0,56 мг; антиоксидант (Oxytrap PXN), 125 мг.

Приводится на кг ростового рациона: витамин А (ретинилацетат), 10000 МЕ; витамин D3 (холекальциферол), 2000 МЕ; витамин Е (DL-α-токоферол), 20 мг; витамин К3 (менадион), 2,3 мг; витамин В1 (тиамин), 0,8 мг; витамин В2 (рибофлавин), 4,5 мг; витамин B6 (пиридоксин HCl), 1,9 мг; витамин B12 (цианокобаламин), 20 мкг; ниацин, 30 мг; D-пантотеновая кислота, 8 мг; холина хлорид, 400 мг; фолиевая кислота, 0,5 мг; биотин, 50 мкг; FeSO₄×H₂O, 150 мг; CuSO₄×5H₂O, 40 мг; MnO, 100 мг; ZnSO₄×H₂O, 145 мг; KI, 1,9 мг; Na₂SeO₃, 0,50 мг; антиоксидант (Oxytrap PXN), 125 мг.

²Согласно расчетам CVB (2006);³AFD=кажущаяся фекальная усвояемость;⁴TFD=истинная фекальная усвояемость.

Таблица 37

Рассчитанный и проанализированный питательный состав стартовых и ростовых рационов

В общей сложности 252 суточных цыпленка-петушка породы Росс 308, полученных от племенных бройлеров в возрасте 63 недель из примера 7, отбирали от общего количества вылупившихся цыплят-петушков из примера 8. Цыплят отбирали случайным образом из различных экспериментальных единиц в инкубаторе, обеспечивая сохранение без повреждений экспериментальной единицы птичника для племенных бройлеров, размещая цыплят из одной экспериментальной единицы птичника для племенных бройлеров в одну клетку птичника для выращивания. В каждой клетке содержали 30 цыплят с начальной индивидуальной массой тела 49,1 г±1,0 г и 48,5 г±1,0 г для соответственно единиц А и В.

Клетки (90×225 см) имели приподнятый пол, состоящий из нержавеющей стали, покрытый 2-сантиметровым слоем древесной стружки. Каждая клетка была оборудована двумя наборами из двух регулируемых нипельных поилок и кормушки, которые были расположены внутри клетки в течение первых 13 дней. Начиная с 14 дня, корм подавали посредством желобковой кормушки в передней части клетки. И корм и вода были предоставлены вволю на протяжении всего исследования. Непрерывное искусственное освещение поддерживали в течение 23 часов/сутки в течение первых трех дней эксперимента, 20 часов/сутки с четвертого дня по седьмой день и 18 часов/сутки в течение оставшейся части эксперимента. Температуру, относительную влажность и вентиляцию контролировали с помощью компьютера, при этом в первые 13 дней температуру постепенно снижали на 0,5°С в сутки, с 14 дня до 35 день температуру постепенно снижали примерно на 0,4°С с 34,0°C в день поступления (суточных цыплят) до температуры 19,6°С на 35 день и поддерживали постоянной на уровне 19,6°С до конца эксперимента (35 день). Температуру в помещении постоянно фиксировали с использованием регистраторов данных, а относительную влажность устанавливали на уровне 50% в течение всего эксперимента. Цыплят вакцинировали методом распыления против болезни Ньюкасла с использованием вакцины Poulvac NDW (вакцина Poulvac NDW, Intervet, Boxmeer, Нидерланды) в возрасте 14 дней.

Температура в помещении постоянно фиксировали в течение всего эксперимента с использованием регистраторов данных, размещенных внутри птичника, один на помещение. Индивидуальные массы тела регистрировали в начале эксперимента (0 день) и в возрасте 7, 14, 21, 28 и 35 дней. Кроме того, потребление корма для каждой клетки регистрировали в тот же день, когда взвешивали цыплят. На основе рассчитанного прироста массы тела и потребления корма рассчитывали соотношение корм к приросту (F:G) как кг потребленного корма/кг прироста массы. Общее потребление корма на клетку корректировали с учетом смертности, выбраковки и отклонений. Европейский индекс птицы (De Herdt et al., 1999) рассчитывали с (1) и без учета (2) смертности, используя следующие формулы:

Европейский индекс птицы=(окончательная масса тела (г)×(100%- смертность%))/((10×период в днях)×общий ККК)

1. Европейский индекс птицы без учета смертности рассчитывали с использованием следующей формулы:

2. Европейский индекс птицы=(окончательная масса тела (г)×100)/((10×период в днях)×общий ККК)

Для оценки формирования иммунного статуса у цыплят всем цыплятам индивидуально инокулировали HuSA согласно методу, описанному Parmentier и др. (2008), в возрасте 14 дней в трахею, и отбирали образцы крови (6 цыплят на клетку, маркированные цветом) на 14, 21, 28 и 34 день. Плазму крови хранили для дальнейшего анализа на содержание IgT, IgA, IgY, и IgM (лаборатория Университета Вагенинген, Вагенинген, Нидерланды). Еженедельно, начиная с возраста 21 день, несколько экспертов давали оценку от 1 до 5 качеству помета. На 34 день эксперимента отбирали случайным образом пять птиц на клетку (исключая явные отклонения). Фекалии собирали в течение ночи и отбирали утром (35 день).

После отбора фекалии тщательно перемешивали, и пластиковую пробирку вместимостью 10 мл (пробирка для крови с гепарином) наполняли для анализа свободной воды, и БИК-контейнер наполняли для БИК-анализа (лаборатория Provimi, Роттердам, Нидерланды). Содержание свободной воды анализировали центрифугированием наполненных пробирок при 3000 об/мин в течение 12 минут. Воду (г) на поверхности твердой фазы выражали в процентах от веса фекалий (г) до центрифугирования. В возрасте 35 дней птиц выдерживали на голодной диете в течение ночи (около 8 часов) и забивали на следующий день. Утром на 36 день этих отобранных птиц последовательно взвешивали, убивали посредством CO₂/O₂, обескровливали и удаляли перья. Определяли вес тушек (неразделанной птицы без перьев, крови, органов, кишечника, головы и ног ниже коленного сустава) и рассчитывали убойный выход тушки как процент от веса птицы, лишенной корма (веса целой птицы до убоя). Кроме того, определяли вес грудки (большая грудная мышца, малая грудная мышца, грудная кость и ключица) и брюшной жировой ткани, и рассчитывали их выход как процент от веса тушки. Также определяли вес селезенки и печени, и также относительно выражали в процентах от индивидуального веса тела.

Все нормально распределенные показатели продуктивности подвергали процедуре описания PROC MIXED в SAS версии 9.3 (SAS Institute Inc., Cary, NC) в соответствии со следующей статистической моделью:

Y_ij=μ+α_i+b_j+ε_ij

где:

Y_ij=конкретный признак, измеренный для каждой экспериментальной единицы;

μ=общее среднее значение для конкретного признака;

α_i=фиксированный эффект обработки племенных бройлеров (i=1-2);

b_j=случайный эффект блока (j=1-6);

ε_ij=вектор остаточных ошибок.

Смертность анализировали как биномиальные, показатели помета как порядковые данные с использованием процедуры описания PROC GLIMMIX в SAS версии 9.3 (SAS Institute Inc., Cary, NC) с использованием той же модели. Для учета эффекта дня повторных показателей помета для такого анализа день учитывали в статистической модели как ковариант. Для корректировки субъективного влияния в оценивании помета, переменная субъект рассматривалась как случайный эффект в статистической модели. Результаты анализа крови анализировали с использованием повторных измерений, с отдельно взятой птицей в качестве субъекта. Контрасты использовали для сравнения эффектов обработки. Описание контраста приводится ниже, и характеристика контраста для ответа на вопрос приведен в таблице 38.

1) Был ли эффект PROVIOX 50?

Таблица 38

Описание контраста, используемого для статистического анализа

Питательный состав рационов соответствовал ожидаемым значениям (таблица 37). Наблюдаемое состояние здоровья птиц было хорошим на протяжении всего эксперимента. Хотя смертность, включая выбраковку, составляла 5,7%, что несколько выше по сравнению с фактическими уровнями (от 3 до 4%), а также с предыдущими исследованиями выращивания бройлеров (среднее значение 3,9%). Средний технический прирост массы (средняя масса тела на 34 дней: 2516 г) был выше по сравнению с другими экспериментами, проведенными в птичниках для бройлеров инновационного центра Velddriel (среднее значение МТ: 2383 г). Вариация в пределах блоков (LSD), выраженная в процентах от среднего прироста массы птицы, была средней для прироста массы и ККК с 4,2% и 1,7% соответственно (макс. 21 цыпленок на клетку и 6 повторностей - данные не приведены) по сравнению с предыдущими данными (среднее значение LSD МТ и ККК: 4,0% и 1,8%).

На показатели роста потомства статистически достоверно не влияет любой из рационов племенных бройлеров. В предыдущем исследовании по оценке влияния PROVIOX 50 в рационах племенной птицы на показатели роста потомства установили 2,4% повышения ADG при уровне включения, которая также была использована в текущем опыте. Теперь количественный прирост составил только 1,3% (смотри таблицу 39). В предыдущем исследовании эффект замены был более выраженным при высоком уровне витамина Е (160 ppm, повышение ADG и F:G). Текущие и предыдущие результаты свидетельствуют о том, что комбинация антиоксидантов в рационе племенных бройлеров эффективна для показателей роста потомства, и эффекты, как представляется, наиболее ярко выражены для потомства более молодых племенных бройлеров и при основном уровне витамина Е 80 ppm.

Таблица 39

Влияние обработки племенных бройлеров на смертность потомства, массу тела, европейский индекс птицы (EPI), среднесуточный прирост (ADG), среднесуточное потребление корма (ADFI) и соотношение корм к приросту (F:G) петушков породы бройлеров Росс 308

Смертность=процент общей смертности и выбраковки по отношению к количеству птиц на день 0; EPI=((окончательная масса тела (г)×(100%-смертность%))/((10×период в днях)×общий ККК): EPI без учета смертности=((окончательная масса тела (г)×100%)/((10×период в днях)×общий ККК); F:G=потребление корма г: прирост г).

¹Отдельная клетка с 21 птицей.

²F:G, скорректированное с учетом МТ=F:G, скорректированное на 2,491 грамм массы тела в возрасте 34 дней.

Коррекция на -0,02 для каждых 100 г лишней массы.

нд=P>0,10; *=P<0,05; ***=P<0,01.

При оценке показателей вскрытия и результатов анализа фекалий (таблица 40) не обнаружили никаких статистически достоверных различий.

Таблица 40

Влияние обработки племенных бройлеров на показатели вскрытия, показатели помета и состав фекалий петушков породы бройлеров Росс 308

¹В среднем 5 птиц на клетку, n - количество клеток;

²Мясо грудки % скорректированный на 2,491 грамм массы тела в возрасте 42 дней. Коррекция на 0,2% для каждых 100 г лишней массы;

³Средний показатель на обработку (с учетом уровня клетки).

Сообщалось, что титры IgA к HuSA были очень низкими и следовательно ненадежными, и поэтому данные результаты не обсуждаются. Никакого статистически достоверного взаимодействия не установлено между обработкой племенной птицы и днем для HuSA специфических титров плазмы (смотри таблицу 41).

Таблица 41

Эффекты взаимодействия между обработкой племенных бройлеров и днем отбора на титры к HuSA и LPS в плазме крови

Для титра IgG к LPS установлено статистически достоверное взаимодействие, которое объясняется относительно более высоким приростом в возрасте 34 дней для потомства племенной птицы, получающей контрольный рацион (фиг.9).

HuSA специфические титры статистически достоверно зависят от дня, свидетельствую, что до инокуляции HuSA значения были ниже, и повышались после инокуляции, затем снова снижались, когда птенцы становились старше (смотри фиг.10). Это соответствует тому, что ожидалось. Титры к LPS повышались, когда птенцы становились старше, это также соответствует тому, что ожидалось.

Как показано на фиг.11, титры к LPS (IgG, IgM и IgT) были статистически достоверно выше у потомства племенной птицы, получающей частично замененный витамин Е на PROVIOX 50. Эти результаты свидетельствуют о том, что иммунная активность была выше у потомства бройлеров, получающих PROVIOX 50.

На основании результатов настоящего и предыдущих исследований по выращиванию можно предположить, что показатель прироста потомства улучшается при скармливании комбинации антиоксидантов в рационе племенных бройлеров. Эффекты, как представляется, наиболее ярко выражены для потомства более молодых племенных бройлеров и с основным уровнем витамина Е 80 ppm. Анализ иммунных показателей плазмы крови свидетельствует о повышении неспецифических титров, при частичной (50%) замене витамина Е на PROVIOX 50 в рационе племенных бройлеров.

ПРИМЕР 10. СПОСОБ КОРМЛЕНИЯ ЖИВОТНОГО СЕМЕЙСТВА СВИНЬИ

Цель данного примера доказать эффективность PROVIOX 50 на свиньях. Эффективность продукта оценивали сравнением группы с добавлением PROVIOX 50 на основе критерия ответной реакции свиноматок, критерия ответной реакции помета, антиоксидантного статуса и статуса витамина Е с отрицательной контрольной группой и группами с различным содержанием витамина Е.

Испытание проводилось на ферме в Польше. В целом условия содержания и ухода на выбранном предприятии считались типичными для географического региона. Производственные сооружения фермы для случки, супороса и опороса были полностью закрытыми зданиями с вентилируемыми и отапливаемыми помещениями для поддержания минимальной температуры зоны комфорта для свиноматок.

Температуру окружающей среды в помещении для супороса свиноматок и помещении для опороса поддерживали на относительно постоянном уровне 18-20°C, а относительную влажность на 60%. В целом все производственные помещения соответствуют требованиям для сравнительных испытаний групп и требованиям действующих правил в отношении защиты животных.

Испытание проводили на свиноматках (первородящих и повторнородящих) одного и того же типа скрещивания (PIC). В испытание включали 52 свиноматки в системе непрерывного опороса. Каждая группа состояла из 13 животных. Испытание проходило с 1 дня супоросности до повторной случки в следующем цикле.

Было два состава рациона: LP 0-90 дн., LK 90 дн. супоросности-отъем. Корм, скармливаемый на протяжении всего исследования, был произведен на кормодробилке фермы. Произведенный корм представлял собой полнорационный комбикорм в соответствии со стандартными процедурами по организации кормления на участвующей ферме. По консистенции корм представлял собой комбикорм. Все рационы анализировали на содержание питательных веществ и витамина Е (AOAC, 2000). Корма приведены в таблице 42.

Таблица 42

Наименование испытуемого продукта: PROVIOX 50

Каждой группе скармливали полноценный рацион для супоросных свиноматок (0-90 дн.) и для лактирующих свиноматок (90 дн. супоросности-отъем) с различным добавлением витамина Е и испытуемого продукта (таблица 43А) и рацион в период лактации (смотри таблица 43B).

Таблица 43А

Рационы в период супоросности (0-90 дн. супоросности) -LP рационы

Таблица 43B

Рационы в период лактации (90 дн. супоросности-28 дн. лактации) -LK рационы

Следующие критерии продуктивности контролировали во время испытания: (i) критерий ответной реакции свиноматок (фактический паритет, процент опороса, выбракованные свиноматки - количество и причины, интервал отъем-случка, процент опороса в следующем цикле); (ii) критерий ответной реакции помета (количество поросят, общее количество, живых, мертворожденных, мумифицированных; вес поросят и помета, выживаемость). Во время испытания контролировали следующие биохимические критерии (крови) для свиноматок (случка, опорос и отъем), поросят 21-й день: (i) активность глутатионпероксидазы (ГП); (ii) активность супероксиддисмутазы (СОД); (iii) общий антиоксидантный статус (ОАС); (iv) содержание витамина Е; (v) содержание витамина А.

Для определения оксидантного статуса образцы крови отбирали у свиноматок и поросят в пробирки с антикоагулянтом лития - получали цельную кровь для анализа. Одновременно брали образцы крови для сгустка крови. Их центрифугировали (1500 об/мин, 15' темп. 4°С) и полученную сыворотку отбирали пипеткой в отдельные пробирки.

В исследованиях оксидантного статуса свиноматок и поросят использовали соответствующие каждому из показателей наборы реактивов компании Sigma-Aldrich. Определение проводили в соответствии с описанием правил и процедур, установленных производителем.

Содержание ОАС (общего антиоксидантного статуса) определяли с использованием набора для анализа антиоксидантов (Кат. № CS0790), активность СОД (супероксиддисмутазы) определяли с использованием набора для определения СОД 19160, активность ГП (набор для определения активности глутатионпероксидазы) Кат. № CGP1, содержание витаминов А и Е по McMurray и Blanchflower 1979 г. (Journal of Chromatography 178, 525-531).

ОАС

Образцы сыворотки (10 мкл) в двух повторностях инкубировали при комнатной температуре в течение 5 минут с рабочим раствором АБТС (2,2ʹ-азино-бис(3-этилбензтиазолин-6-сульфоновой кислоты) (150 Пл) и раствором с миоглобином (20 Пл). Одновременно получали калибровочную кривую на основе серийных разведений эквивалента Trolox в диапазоне от 0,015 до 0,42 мМ (ммоль).

Образовавшийся феррил радикал из миоглобина и перекиси водорода вызывает окисление АБТС и образование катион-радикала ABTS*. Полученный хромоген имеет сине-зеленый цвет. В присутствии антиоксидантов катион-радикал подавляется до степени, зависящей от активности антиоксиданта, и интенсивность цвета уменьшается пропорционально. Цвет измеряли с использованием спектрофотометра при длине волны 405 нм.

Образцы сыворотки (20 мкл) в двух повторностях инкубировали при температуре 37°С в течение 20 минут с рабочим растворои WST (тетразолиевой натриевой соли, 2-(4-лодофенил)-3-(4-нитрофенил)-5-(2,4-дисульфофенил)-2H-тетразолий мононатриевой соли) (200 Пл) и рабочим раствором фермента (20 Пл). Одновременно получали образцы холостых проб (два реагента, и холостая проба для каждого образца) и калибровочную кривую на основе серийных разведений СОД в диапазоне от 200 до 0,001 ед/мл. Оптическую плотность холостой пробы, стандартных и испытуемых образцов определяли на спектрофотометре при длине волны 450 нм. WST образует водорастворимый формазановый краситель при восстановлении супероксид-аниона. Скорость восстановления O₂ линейно связана с активностью ксантиноксидазы (КО). Активность СОД измеряется как степень блокирования образования формазанового красителя.

Образцы цельной крови (отбор крови от животных в пробирки с антикоагулянтом лития) в двух повторностях (10 Пл) добавляли в 930 мл буфера (рН 8), перемешивали (Vortex 10'), а затем добавляли 10 Пл 70% водного раствора гидроперекиси трет-бутила, перемешивали (инверсией) и измеряли оптическую плотность непосредственно на спектрофотометре при длине волны 340 нм. Через 1 минуту повторяли измерения. Одновременно получали холостые пробы (реагент) и калибровочную кривую на основе на серийных разведений ГП в диапазоне от 20 до 50 ед/мл. Снижение оптической плотности НАДФН (в течение 1 минуты), измеренное при длине волны 340 нм в результате окисления НАДФН в НАДФ+, является показателем активности ГП.

Образцы сыворотки (1 мл) депротеинизировали безводным этанолом (1 мл), экстрагировали с использованием 5 мл н-гексана (Vortex 5'), а затем центрифугировали (3000 об/мин, 10', темп. 4°С). Полученные 4 мл супернатанта выпаривали досуха в атмосфере азота, а затем растворяли в 1 мл 96% этанола и анализировали высокоэффективной жидкостной хроматографией (ВЭЖХ).

Содержание ретинола и токоферола определяли методом обратно-фазной высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) с использованием хроматографа SHIMADZU. Использовали колонку Nucleosil С18, подвижной фазой являлась смесь метанол-вода (95:5, об./об.). Измерение проводили с использованием УФ-детектора при длине волны 326 нм для определения содержания ретинола и флуоресцентного детектора (длина волны возбуждения - 295 нм, длина волны эмиссии - 330 нм) для определения содержания токоферола. Концентрацию ретинола и токоферола рассчитавали на основе пиков внешних стандартов (Sigma-Aldrich (±)-α-токоферол, ретинол витамин A-спирт).

Экспериментальные данные статистически обрабатывали с использованием однофакторного дисперсионного анализа и критерия Дункана. Полученные результаты определяли с использованием среднеарифметического значения (х), стандартной ошибки среднего значения (SEM) и уровня значимости (P). Все расчеты проводились с использованием программного обеспечения STATISTICA 10.

Результаты анализа репродуктивной способности свиноматок приведены в таблице 44 и таблице 45.

Таблица 44

Продуктивность свиноматок

Таблица 45

Продуктивность помета

a, b - P<0,05.

Как показано в таблицах 44 и 45, средние паритеты обработанных и контрольных свиноматок составляли 3,85, 3,46, 3,50 и 3,23 соответственно. Свиноматки, получавшие рационы с витамином Е или с витамином Е и добавлением PROVIOX 50, характеризовались лучшей плодовитостью и эффективностью случки по сравнению со свиноматками отрицательной контрольной группы (количество не супоросных свиноматок после первой и второй случки, процент опороса). Однако наблюдаемые различия не являются статистически достоверными. В данном эксперименте добавление продукта полифенолов (PROVIOX 50) не оказало статистически достоверного влияния на количество выбракованных свиноматок, но демонстрировало тенденцию к более короткому интервалу отъем-повторная случка. Добавление разного уровня витамина Е и PROVIOX 50 в рацион свиноматок повышало процент опороса в следующем цикле, но различия между группами не являются статистически достоверными. С учетом результатов можно сделать вывод, что свиноматки, получавшие рационы с добавлением PROVIOX 50, характеризовались аналогичной плодовитостью и эффективностью случки по сравнению с группой свиноматок, которым скармливали рационы с витамином Е.

Не было никаких различий (Р<0,05) в общем количестве поросят, рожденных живыми, слабыми или рожденных мумифицированными (таблица 45). В зависимости от обработки среднее количество поросят, рожденных живыми от исследуемых свиноматок, изменялось между 11,50 до 13,18, а среднее количество слабых поросят изменялось от 0,36 до 0,8. Экспериментальные группы имели более высокое количество живорожденных поросят в помете (12,82, 13,18, 13,00), чем контрольная группа (11,50). Наблюдаемые различия не являются статистически достоверными (Р<0,05). Среднее количество мумифицированных поросят изменялось от 0 до 0,2. Количество отлученных поросят в помете имело тенденцию к увеличению (P=0,06) у свиноматок, которым скармливали рационы с витамином Е и добавлением PROVIOX 50 (11,73, 11,82, 11,55 против 9,80). Экспериментальные группы статистически достоверно (Р<0,05) имели более высокий вес помета (18,50, 19,07, 19,34 кг), чем контрольная группа (15,59 кг). Вес поросят при рождении в экспериментальной группе составлял 1,44 (группа 2), 1,45 (группа 3) и 1,49 (группа 4) соответственно, в то время как у контрольных животных (группа 1) составлял в среднем 1,46 кг. Наблюдаемые различия не являются статистически достоверными (Р<0,05). Группы с витамином Е и добавлением PROVIOX 50 статистически достоверно (Р<0,05) имели более высокий вес помета при отъеме (85,05, 84,33, 85,98 кг), чем контрольная группа (67,85 кг). После периода лактации конечный вес тела поросят из обработок 2, 3 и 4 составлял 7,16, 7,31 и 7,48 кг соответственно, в то время как животные из контрольной группы (1) весили в среднем 6,94 кг. Различия в весе между группами при отъеме не являются статистически достоверными. Применение витамина Е и PROVIOX 50 в рационах свиноматок снижает смертность экспериментальных поросят, но различия между группами не являются статистически достоверными. Тремя основными причинами смерти являлись: слабость, задавливание свиноматкой и обезвоживание.

С учетом результатов можно сделать вывод, что свиноматки, получавшие рационы с добавлением PROVIOX 50, характеризовались аналогичной плодовитостью, эффективностью случки и продуктивностью помета по сравнению с группой свиноматок, которым скармливали рационы с добавлением витамина Е.

В каждом периоде измерения во время супороса и лактации концентрации α-токоферола (витамина Е) в сыворотке были выше (P<0,001) при добавлении витамина Е в рацион свиноматок. По мере увеличения уровня добавления витамина Е концентрации α-токоферола в сыворотке увеличивались (таблица 46). Хотя увеличение витамина Е в сыворотке было продемонстрировано в обоих периодах (опороса и отъема), результаты показали большее увеличение при опоросе, чем позже. В группе IV (витамин Е 50/75 мг/кг+PROVIOX 50) концентрации α-токоферола в сыворотке при опоросе и при отъеме были аналогичными группе III (вит. E 100/150 мг/кг). Наблюдалось снижение α-токоферола в сыворотке, начиная со случки до опороса, но только в группе 1 и 2. При скармливании базового рациона концентрации витамина А (ретинола) в сыворотке снижались, начиная со случки до опороса. При обеспечении добавления витамина Е наблюдалось линейное увеличение (P<0,001) концентрации витамина А в сыворотке при опоросе. По сравнению со свиньями, которым скармливали 50/75 мг витамина Е/кг рациона (группа 2), свиньи, которым скармливали рацион 3 (100/150 мг вит. Е/кг) и 4 (вит. Е+PROVIOX 50), имели более высокие концентрации витамина A в сыворотке. Обогащение рациона витамином Е и PROVIOX 50 имело позитивное влияние (P<0,05) на концентрации витамина А в сыворотке свиноматок. Витамин Е не оказывал никакого влияния на концентрации витамина А в сыворотке при отъеме.

Проводили различные анализы для оценки антиоксидантного эффекта витамина Е и PROVIOX 50 в рационе, как показано в таблице 46.

Таблица 46

Содержание витаминов Е и А (пг/мл) в сыворотке свиноматок

a, b - P<0,05 A, B - P<0,01.

Общий антиоксидантный статус (ОАС) сыворотки использовали в качестве индикатора антиоксидантного статуса животного. Добавление разного уровня витамина Е и PROVIOX 50 изменяет ОАС. Для ОАС наблюдались различия между контролем (0 вит. Е) и экспериментальными группами. ОАС сыворотки больше увеличивался у свиноматок, которым скармливали витамин Е с PROVIOX 50, чем у свиноматок, которым скармливали только витамин Е. Значения СОД (супероксиддисмутазы) в сыворотке изменялись от 70,99 до 73,28 единиц активности фермента (ед/мл) при случки. На значения активности СОД в сыворотке влиял уровень витамина Е в рационе при опоросе и отъеме (P<0,001). Самые высокие значения активности СОД наблюдались у свиноматок, которым скармливали витамин Е и PROVIOX 50, особенно при отъеме (P<0,001). Значение активности ГП (глутатионпероксидазы) в крови у свиноматок из контрольной группы было статистически достоверно ниже (P<0,001), чем у свиноматок, получающих витамин Е. Самые высокие значения активности ГП наблюдались у свиноматок, которым скармливали витамин Е и PROVIOX 50 в обоих периодах (опороса и отъема) (P<0,001).

На концентрацию α-токоферола в сыворотке поросят в возрасте 21 дн. влиял как источник антиоксидантов (витамин Е и PROVIOX 50), так и уровень витамина Е, скармливаемые для воспроизводительной функции самок (смотри таблицы 47 и 48).

Таблица 47

Общий антиоксидантный статус (ОАС ммоль/л сыворотки), активность супероксиддисмутазы (СОД ед/мл сыворотки) и глутатионпероксидазы (ГП ед/мл крови) в сыворотке и крови свиноматок